авторефераты диссертаций БЕСПЛАТНАЯ  БИБЛИОТЕКА

АВТОРЕФЕРАТЫ КАНДИДАТСКИХ, ДОКТОРСКИХ ДИССЕРТАЦИЙ

<< ГЛАВНАЯ
АГРОИНЖЕНЕРИЯ
АСТРОНОМИЯ
БЕЗОПАСНОСТЬ
БИОЛОГИЯ
ЗЕМЛЯ
ИНФОРМАТИКА
ИСКУССТВОВЕДЕНИЕ
ИСТОРИЯ
КУЛЬТУРОЛОГИЯ
МАШИНОСТРОЕНИЕ
МЕДИЦИНА
МЕТАЛЛУРГИЯ
МЕХАНИКА
ПЕДАГОГИКА
ПОЛИТИКА
ПРИБОРОСТРОЕНИЕ
ПРОДОВОЛЬСТВИЕ
ПСИХОЛОГИЯ
РАДИОТЕХНИКА
СЕЛЬСКОЕ ХОЗЯЙСТВО
СОЦИОЛОГИЯ
СТРОИТЕЛЬСТВО
ТЕХНИЧЕСКИЕ НАУКИ
ТРАНСПОРТ
ФАРМАЦЕВТИКА
ФИЗИКА
ФИЗИОЛОГИЯ
ФИЛОЛОГИЯ
ФИЛОСОФИЯ
ХИМИЯ
ЭКОНОМИКА
ЭЛЕКТРОТЕХНИКА
ЭНЕРГЕТИКА
ЮРИСПРУДЕНЦИЯ
ЯЗЫКОЗНАНИЕ
РАЗНОЕ
КОНТАКТЫ

Биосинтез микроцина с и механизмы устойчивости клеток к антибиотику

На правах рукописи

Новикова Мария Владимировна

БИОСИНТЕЗ МИКРОЦИНА С И МЕХАНИЗМЫ УСТОЙЧИВОСТИ

КЛЕТОК К АНТИБИОТИКУ

Специальность 03.00.26 – молекулярная генетика

АВТОРЕФЕРАТ

диссертации на соискание ученой степени

кандидата биологических наук

Москва - 2009

Работа выполнена в лаборатории молекулярной генетики микроорганизмов Учреждения Российской академии наук Института биологии гена РАН и в группе регуляции экспрессии генов мобильных элементов прокариот Учреждения Российской академии наук Института молекулярной генетики РАН

Научный руководитель: доктор биологических наук Северинов Константин Викторович

Официальные оппоненты: доктор биологических наук, профессор Гельфанд Михаил Сергеевич доктор биологических наук Колб Вячеслав Адамович

Ведущая организация: Учреждение Российской академии наук Институт биоорганической химии им. М. М. Шемякина и Ю. А. Овчинникова РАН

Защита диссертации состоится 27 октября 2009 года в 11 часов на заседании Диссертационного совета Д 002.037.01 при Учреждении Российской академии наук Институте биологии гена РАН по адресу: 119334, Москва, ул. Вавилова, д. 34/

С диссертацией можно ознакомиться в библиотеке Учреждения Российской академии наук Института молекулярной биологии им. В. А. Энгельгардта РАН по адресу: 119991, Москва, ул.

Вавилова, д. 32.

Автореферат разослан _ сентября 2009 года.

Ученый секретарь диссертационного совета канд. фарм. наук Л. С. Грабовская

ОБЩАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РАБОТЫ

Актуальность работы. С открытия и выделения пенициллина в 30-40-х годах XX века началось массовое применение антибиотиков в качестве медицинских препаратов для лечения заболеваний, вызываемых микроорганизмами. К сожалению, практически в то же время было обнаружено, что постоянное использование одних и тех же антибактериальных соединений может приводить к появлению устойчивости к их действию у микроорганизмов. Ученые предполагают, что в недалёком будущем существующие антибиотики могут исчерпать свой потенциал, так как патогенные микроорганизмы приобретут резистентность к широкому спектру антибактериальных соединений. В связи с этим открытие и исследование новых антибиотиков, а также изучение механизмов устойчивости клеток к ним являются крайне актуальными вопросами современной микробиологии.

В настоящее время широко изучаются микроцины - антибактериальные вещества, продуцируемые энтеробактериями. В отличие от большинства антибиотиков, синтезируемых специальными ферментами без участия рибосом, микроцины - это пептиды, закодированные в ДНК (чаще всего их гены располагаются на плазмидах) и синтезируемые на рибосомах.

Характерной особенностью микроцинов является низкая молекулярная масса, не превышающая 10 кДа. Наибольший интерес в последние годы привлекают микроцины, подвергающиеся сложным посттрансляционным модификациям, в результате которых могут образовываться самые необычные структуры. К таким посттрансляционно модифицированным микроцинам и относится микроцин С (МсС), а также два других микроцина – микроцин В и микроцин J.

Специфический ингибитор ДНК-гиразы микроцин В – богатый остатками глицина пептид, содержащий четыре тиозольных и четыре оксазольных кольца. Микроцин J - пептид, состоящий из 21 аминокислоты и имеющий необычную структуру «протянутого лассо». N-концевой глицин микроцина J образует лактамовую связь с карбоксильной группой остатка глутаминовой кислоты в восьмом положении. В результате образуется кольцо, через которое пропущен С-конец молекулы. Микроцин J ингибирует транскрипцию, связываясь с аминокислотными остатками вторичного канала бактериальной РНК-полимеразы и предотвращая доступ субстратов (рибонуклеозидтрифосфатов) к каталитическому центру.

МсС является нуклеотид-гептапептидом, который ингибирует синтез белка в чувствительных клетках. Его структура и механизм действия были открыты сотрудниками Института молекулярной генетики РАН и Института биологии гена РАН. Мишенью МсС является одна из аминоацил-тРНК-синтетаз - аспартил-тРНК-синтетаза (AspRS). Сам нуклеотид гептапептид является неактивной транспортной формой антибиотика;

для перехода в активное состояние МсС должен подвергнуться процессингу внутриклеточными пептидазами. В результате высвобождается активная часть негидролизуемый аспартил-аденилат (процессированный МсС), который и ингибирует AspRS.

Такой необычный механизм действия по аналогии со стратегией, использованной древними греками для захвата Трои, получил название стратегия Троянского коня. Подобный механизм действия также описан для ряда других антибиотиков (альбомицина, агроцина 84, фосфонопептидов).

Следует отметить, что к моменту начала данной работы МсС являлся наименее изученным антибиотиком в группе посттрансляционно модифицированных микроцинов. Кроме его структуры и открытого недавно механизма действия, оставались не до конца изученными синтез McС, его процессинг, регуляция экспрессии микроцинового оперона mccABCDE, транспорт антибиотика в чувствительные клетки, а также механизмы клеточной устойчивости клеток к МсС. В рамках настоящей работы были получены новые данные по некоторым из вышеперечисленных вопросов.

Цели и задачи исследования. Основной целью данной работы являлось изучение механизма созревания МсС, а также определение механизмов устойчивости клеток к антибиотику.



В работе были поставлены следующие задачи:

1. Выяснить роль продуктов генов mccD и mccE микроцинового оперона mccABCDE в синтезе МсС.

2. Исследовать роль MccE в обеспечении устойчивости клеток к антибиотику.

3. Идентифицировать систему транспорта МсС в клетку.

Научная новизна и практическая значимость работы. В ходе работы получены новые данные по механизму синтеза МсС. Впервые установлена роль продуктов генов mccD и mccE микроцинового оперона в созревании антибиотика и определены интермедиатные формы МсС, образующиеся в процессе синтеза.

Открыт и изучен один из механизмов устойчивости клеток к МсС за счёт действия MccE.

Доказано, что С-концевой домен MccE ацетилирует процессированный МсС и тем самым нейтрализует его ингибирующее действие.

Идентифицирован АВС транспортёр который является единственным YejABEF, комплексом внутренней мембраны E. coli, отвечающим за транспорт антибиотика из периплазматического пространства в цитоплазму клетки.

Полученные в данной работе результаты расширяют представления о механизме созревания МсС, транспорте антибиотика, а также о механизмах клеточной устойчивости к МсС и могут быть использованы для решения ряда прикладных задач, например, для химического синтеза МсС и МсС-подобных соединений или для создания более эффективных антибактериальных препаратов на основе МсС.

Публикации и апробация работы. По результатам диссертационной работы опубликовано статьи. Основные положения и результаты работы были представлены на следующих конференциях: 1) «ATP-Binding Cassette (ABC) Proteins: From Multidrug Resistance to Genetic Diseases», March 1 - 8, 2008, Innsbruck, Austria;

2) «IV съезд Российского общества биохимиков и молекулярных биологов», 11 – 15 мая, 2008, Новосибирск, Россия;

3) «FEBS Practical Course on Protein interaction modules», April 18 - 25, 2009, Split, Croatia;

4) «VIII European Symposium of The Protein Society», June 14 - 18, 2009, Zurich, Switzerland;

5) IV Российский симпозиум «Белки и пептиды», 23 – 27 июня, 2009, Казань, Россия;

6) 3rd Congress of European Microbiologists:

«Microbes and Man – interdependence and future challenges», June 28 - July 2, 2009, Gothenburg, Sweden.

Структура и объём работы. Диссертационная работа состоит из введения, обзора литературы, материалов и методов исследования, результатов и обсуждений, заключения, а также выводов, приложений и списка литературы. Работа изложена на _ страницах машинописного текста, включая 2 таблицы, _ рисунков. Список цитируемых литературных источников включает наименований.

СОДЕРЖАНИЕ РАБОТЫ

1. Биосинтез McC Гены, отвечающие за синтез зрелой формы МсС, или McC1178 (молекулярная масса Да) (Рис. 1а), а также за устойчивость клетки-продуцента к синтезируемому антибиотику, образуют оперон mccABCDE (Рис. 2). mccA кодирует гептапептид–предшественник МсС;

продукт гена mccB присоединяет к С-концевому аминокислотному остатку гептапептида аденозинмонофосфат;

продукт гена mccC – трансмембранный белок, который экспортирует зрелый МсС из клетки-продуцента. Для определения функций продуктов генов mccD и mccE нами были получены плазмиды mccABCE и mccABCD на основе плазмиды pUHAB (плазмида pUHAB содержит полный микроциновый оперон mccABCDE), несущие амбер-мутации, соответственно, в начале mccD и mccE, и выделены и охарактеризованы производные МсС, продуцируемые клетками, содержащими полученные плазмиды.

Рисунок 1. Структуры форм МсС и синтетических аналогов антибиотика: а) МсС1178;

б) МсС1120;

в) процессированная форма МсС1178;

г) синтетические аналоги процессированного МсС, где R – Asp, Glu или Leu;

д) синтетические аналоги зрелого МсС, где R – Asp, Glu или Leu.

Рисунок 2. Структура микроцинового оперона mccABCDE.

mccABCE, Формы МсС, продуцируемые клетками, содержащими и клетками, содержащими mccABCD. Анализ препарата МсС, выделенного из культуры клеток E. coli дикого типа, содержащих плазмиду mccABCE (в отсутствии функционального гена mccD), показал, что зрелый антибиотик не продуцируется, а основным продуктом синтеза является производное МсС, обладающее антибактериальной активностью, с молекулярной массой 1120 Да (МсС1120).

Ранее было обнаружено, что клетки дикого типа, содержащие плазмиду с микроциновым опероном в отсутствии mccE, не синтезируют McC, в то время как клетки pepApepBpepN, лишённые трёх аминопептидаз широкой специфичности – PepA, PepB и PepN, продуцируют антибиотик (клетки pepApepBpepN устойчивы к МсС: в их цитоплазме процессированная форма антибиотика (Рис. 1в) не образуется;





причины, по которым экспрессия микроцинового оперона в отсутствии mccE зависит от культуры клеток, неизвестны). Поэтому для выяснения роли MccE в созревании антибиотика была использована культура клеток pepApepBpepN.

При контрольном выделении антибиотика из клеток pepApepBpepN, содержащих плазмиду с полным микроциновым опероном, было показано, что в препарате выделенного МсС присутствуют два мажорных масс-пика, соответствующие МсС1178 и McC1149 - производному McC1178, не содержащему формильной группы на N-концевом остатке Met в составе гептапептида. Количество McC1149, выделяемого из клеток дикого типа, содержащих полный микроциновый оперон, в несколько раз меньше, чем количество МсС1178 (было выдвинуто предположение, что в клетках pepApepBpepN повышена активность деформилазы). Анализ выделенного МсС из клеток pepApepBpepN, содержащих плазмиду с микроциновым опероном с мутацией в гене mccE, показал, что основными продуктами синтеза также являются две формы МсС - МсС1120 и его деформилированное производное - МсС1092.

Таким образом, главным продуктом, синтезируемым клетками, содержащими плазмиды с микроциновым опероном как в отсутствии продукта гена mccD, так и mccE, является форма МсС с молекулярной массой 1120 Да – МсС1120.

МсС1120: структура и антибактериальная активность. Структура МсС1120 была определена методом ЯМР. Оказалось, что МсС1120 представляет собой микроцин, который состоит из гептапептида и аденозинмонофосфата, в составе которого отсутствует аминопропильная группа (Рис. 1б). Было показано, что McC1120 так же, как и McC1178, не подавляет рост клеток pepApepBpepN, а его антибактериальное действие на рост клеток чувствительной культуры дикого типа в несколько раз слабее, чем МсС1178 (Рис. 3). На основании результатов опытов по ингибированию реакции аминоацилирования тРНКAsp in vitro было установлено, что наличие аминопропильной группы может влиять на сродство антибиотика к ферменту-мишени. Так, концентрация МсС1120, необходимая для 50%-ного ингибирования AspRS, в 10 раз выше, чем соответствующая концентрация МсС дикого типа. Кроме того, в отличие от МсС1178, даже при насыщающих концентрациях МсС1120 не наблюдалось полного ингибирования AspRS. Таким образом, наличие аминопропильной группы существенно увеличивает сродство процессированного МсС к ферменту-мишени.

Объяснение полученным экспериментальным данным было найдено с помощью структурного моделирования комплекса молекулы процессированного МсС и AspRS E. coli, более точно, докинга этой молекулы в аспартил-аденилат-связывающий сайт белка (моделирование было проведено с помощью разработанного ранее программного обеспечения для молекулярного докинга 1). Результаты докинга (Рис. 4) показывают, что положительно заряженная аминогруппа аминопропильной группы предположительно находится вблизи двух отрицательно заряженных карбоксильных групп AspRS Asp475 и Glu482. Электростатическое Ramensky, V., A. Sobol, Zaitseva N., Rubinov A., and V. Zosimov. 2007. A novel approach to local similarity of protein binding sites substantially improves computational drug design results. Proteins 69: 349–357.

притяжение должно увеличивать сродство процессированной формы МсС1178 к ферменту, а также может изменять структуру комплекса фермент-ингибитор, снижая скорость его диссоциации.

Рисунок 3. Сравнение антибактериальной активности МсС1178 и МсС1120. На газон чувствительных клеток E. coli наносили образцы МсС в различных концентрациях. После нескольких часов инкубации измеряли диаметр образующихся зон ингибирования роста клеток.

Рисунок 4. Структурное моделирование комплекса молекулы процессированного МсС и AspRS E. coli.

Таким образом, МсС1120 – это предшественник зрелого МсС, у которого отсутствует аминопропильная группа. Аминопропильная группа в составе МсС1178 повышает антибактериальную активность соединения за счёт улучшения взаимодействия с ферментом.

Возможно, что наличие аминопропильной группы также влияет на эффективность транспорта и процессинга антибиотика.

На основании полученных нами данных, а также данных исследователей можно предложить следующую схему синтеза МсС. MccB, используя в реакции две молекулы ATP, присоединяет аденозинмонофосфат к гептапептиду, образуя МсС1120. После MccB-зависимой модификации гептапептида MccD и MccE осуществляют присоединение аминопропильной группы.

2. Ацетилтрансферазная активность MccEСTD обеспечивает устойчивость клеток к МсС и аналогам процессированного МсС Продукты микроцинового оперона mccABCDE не только обеспечивают синтез МсС, но и отвечают за резистентность клетки-продуцента к нарабатываемому антибиотику. Считается, что MccC - это помпа, находящаяся в цитоплазматической мембране E. coli, которая экспортирует зрелый антибиотик из клетки в окружающую среду. Вторым белком, который обеспечивает «иммунитет» клетки-продуцента к антибиотику, считался продукт mccE.

К моменту начала экспериментов по изучению роли MccE в «иммунитете» к МсС было показано, что в экстракте, содержащем все продукты микроцинового оперона, имеется активность, нейтрализующая ингибирование AspRS процессированным МсС. Нами было предположено, что MccE участвует в этом процессе.

Клетки, продуцирующие MccE и MccECTD, устойчивы к МсС и аналогам его процессированной формы. Из результатов биоинформатического анализа следует, что MccE – это двудоменный белок. N-концевой домен MccE - MccENTD - имеет гомологию с декарбоксилазами, С–концевой домен – MccECTD - гомологичен ацетил-KoА-зависимой ацетилтрансферазе RimL, которая осуществляет ацетилирование рибосомного белка L12.

В настоящей работе были получены экспрессионные плазмиды (на основе вектора pET28), содержащие ген mccE и отдельно его N-концевой и C-концевой домены – pET-mccE, pET mccENTD и pET-mccECTD. Были подобраны условия экспрессии рекомбинантных белков. Для получения MccE и его доменов в растворимом состоянии в клетки E. coli BL21(DE3) была введена дополнительная плазмида pG-KJE8 (dnaK-dnaJ-grgE, groES-groEL (Takara BIO Inc., Roush, R. F., E. M. Nolan, F. Lhr, and C. T. Walsh. 2008. Maturation of an Escherichia coli ribosomal peptide antibiotic by ATP-consuming N-P bond formation in microcin C7. J Am Chem Soc. 130:3603-3609.

Japan)), содержащая несколько генов, кодирующих шапероны. Использование шаперонов белков, которые обеспечивают правильное сворачивание полипептидных цепей, - является одним из известных способов получения белков в растворимой форме.

Для проверки устойчивости McC наносили на мягкий агар с газоном тестируемой культуры и после роста клеток в течение нескольких часов измеряли диаметр образующихся зон ингибирования роста. Кроме МсС, дополнительно была проанализирована устойчивость клеток к тетрациклину (Tc), канамицину (Km) и хлорамфениколу (Сm) (pET28 содержит ген устойчивости к Km, а pG-KJE8 - к Cm). Из полученных результатов (Рис. 5) видно, что клетки, в которых происходит продукция MccE и MccECTD устойчивы к действию МсС. Клетки, продуцирующие MccENTD, чувствительны к антибиотику. Продукция MccE и его двух доменов не оказывает влияние на устойчивость к Tc. Все тестируемые культуры были устойчивы к Кm и Cm (данные не показаны).

Рисунок 5. Проверка устойчивости клеток, продуцирующих MccE и его домены, к МсС и аналогам процессированного МсС. В качестве контроля использовались клетки, содержащие вектор без вставки. На газон тестируемых культур было нанесено 5 мкл McC (300 мкM), мкл AspSA (6 мM), 5 мкл LeuSA (3 мM).

Для того чтобы выяснить, способен ли обеспечивать устойчивость к MccE процессированному МсС, мы использовали его синтетический аналог – аспартилсульфамоиладенозин (AspSA), а также другой аналог процессированного МсС – лейцилсульфамоиладенозин (LeuSA) (Рис. 1г) (получить процессированный МсС в количествах, необходимых для исследований, на данный момент невозможно). В системе in vitro AspSA и LeuSA ингибируют соответствующие аминоацил-тРНК-синтетазы с константами ингибирования – 8,0 nM и 8,4 nM, соответственно. Концентрация этих соединений, необходимая для Van de Vijver, P, G. H. Vondenhoff, T. S. Kazakov, E. Semenova, K. Kuznedelov, A. Metlitskaya, A. Van Aerschot, and K. Severinov. 2009. Synthetic Microcin C Analogs Targeting Different Aminoacyl-tRNA Synthetases. J Bacteriol. Accepted for publication.

ингибирования роста бактериальных клеток in vivo, составляет около 0,5 - 5 мМ (в зависимости от штамма).

Проверка устойчивости клеток, продуцирующих MccE, MccENTD и MccECTD, к аналогам процессированного МсС проводилась аналогично проверке на действие МсС. Оказалось, что клетки, продуцирующие MccENTD, так же, как и клетки, содержащие вектор без вставки, чувствительны к используемым концентрациям AspSA и LeuSA. Клетки, продуцирующие MccE, были устойчивы к АspSA, но частично устойчивы к LeuSA, в то время как продукция MccENTD приводит к полной устойчивости клеток к этим соединениям (Рис. 5).

Таким образом, MccECTD, по-видимому, обеспечивает устойчивость к МсС, функционируя на уровне процессированной формы антибиотика. Кроме того, действие MccE, вероятно, не зависит от аминокислотного остатка в структурах негидролизуемых аминоациладенилатов.

MccECTD обладает ацетилтрансферазной активностью. На основании гомологии MccECTD с RimL было сделано предположение, что MccECTD обладает ацетилтрансферазной активностью, и эта активность необходима для нейтрализации ингибирующего действия процессированного МсС. Мы проверили наличие ацетилтрансферазной активности у С-концевого домена MccE в системе in vitro. В качестве донора ацетильной группы использовали ацетил-KoA (AцKoA), в качестве возможных субстратов – AspSA, LeuSA, McC1178, McC1149, а также GluSA (глутамилсульфамоиладенозин (Рис. 1г), который является ингибитором глутамиловой тРНК синтетазы (константа ингибирования 2,8 nM 4), но в концентрации 5-10 мМ не подавляет рост клеток in vivo) и свободные аминокислоты – Asp, Leu и Glu. На основании данных колорометрического метода, в основе которого лежит определение количества свободного KоА, образующегося в ходе реакции, были посчитаны скорости ацетилирования белком тестируемых MccECTD соединений. Оказалось, что ацетилирует аналоги процессированного МсС (максимальная скорость реакции ацетилирования AspSA – 19,8 ± 0,9 мин-1;

LeuSA – 47,3 ± 3, мин-1;

GluSA – 40,0 ± 3,2 мин-1), а зрелый МсС, McC1149 и свободные аминокислоты не являются субстратами фермента.

Для локализации сайта ацетилирования аналогов процессированного МсС белком MccE продукты реакции были проанализированы методами гидрофильной HILIC-хроматографии (Hydrophilic interaction liquid chromatography) и тандемной масс-спектрометрии в лаборатории А.

Van Aerschot (Rega Institute for Medical Research, Бельгия). Оказалось, что все три соединения – ацетилированные AspSA, LeuSA и GluSA - имели ацетильную группу, которая располагалась на -аминогруппе аминокислотного остатка.

Van de Vijver, P, G. H. Vondenhoff, T. S. Kazakov, E. Semenova, K. Kuznedelov, A. Metlitskaya, A. Van Aerschot, and K. Severinov. 2009. Synthetic Microcin C Analogs Targeting Different Aminoacyl-tRNA Synthetases. J Bacteriol. Accepted for publication.

Для доказательства того, что ацетилтрансферазная активность MccECTD необходима для обеспечения устойчивости к МсС методом сайт-направленного мутагенеза был получен MccECTDмут - MccECTD, несущий двойную замену остатков Ser553 и Glu572 на остатки Ala (на основании данных по структуре активного сайта RimL предполагалось, что эти аминокислоты являются ключевыми остатками активного сайта MccE). Было показано, что максимальные скорости ацетилирования и мутантным белком составляют, AspSA, LeuSA GluSA соответственно, 0,8 ± 0,1 мин-1, 2,4 ± 0,3 мин-1 и 4,0 ± 0,5 мин-1, что в 10-25 раз ниже скорости реакции, катализируемой белком дикого типа. Кроме того, клетки, продуцирующие мутантную форму MccECTD, чувствительны к МсС и его процессированным аналогам (Рис. 5).

Для того чтобы определить, необходима ли ацетилтрансферазная активность MccECTD для синтеза антибиотика, мутации, приводящие к заменам Ser553 и Glu572 на остатки Ala, также были введены в последовательность гена mccE в составе полного микроцинового оперона.

Анализ антибиотика выделенного из культуры клеток pepApepBpepN, содержащих полученную плазмиду, показал, что основным продуктом синтеза является зрелый МсС. Таким образом, ацетилтрансферазная активность MccECTD необходима для обеспечения устойчивости клеток к МсС, но не играет роли в созревании МсС. По-видимому, в синтезе антибиотика участвует N концевой домен белка, гомологичный декарбоксилазам.

Ацетилированные аналоги процессированного МсС не ингибируют реакцию аминоацилирования in vitro. На основании полученных данных мы предположили, что устойчивость клеток-продуцентов к МсС обусловлена тем, что ацетилированный аналог процессированного МсС - ацетил-AspSA - не ингибирует AspRS, а устойчивость к аналогам процессированного МсС связана с тем, что продукты ацетилирования – ацетил-LeuSA и ацетил GluSA - не ингибируют соответствующие аминоацил-тРНК-синтетазы.

Ацетилированные AspSA, LeuSA и GluSA были проверены на способность ингибировать реакцию аминоацилирования in vitro. Из результатов (Рис. 6) видно, что добавление в экстракт клеток немодифицированых ингибиторов или аминоацилсульфамоиладенозинов, проинкубированных с MccENTD, подавляет реакцию аминоацилирования соответствующих тРНК, в то время как продукты, образующиеся в ходе ацетилтрансферазной реакции в присутствии MccECTD, – ацетилированные LeuSA, AspSA и GluSA - не влияют на активность тРНК-синтетаз.

Таким образом, ацетилированные аналоги процессированного МсС не ингибируют тРНК синтетазы.

Рисунок 6. Реакция аминоацилирования в присутствии XSA (AspSA, LeuSA или Glu-SA) и MccEСTD ацетилированных Продукты реакции ацетилирования белком XSA.

CTD (XSA+АцKoA+MccE ) добавлялись к S30 экстрактам E. coli. После чего к экстрактам были добавлены радиоактивные аминокислоты, соответствующие аминокислотным частям ингибиторов, а затем определялось количество аминоацилированной т-РНК по включению радиоактивно меченой аминокислоты (аспартата, лейцина или глутамата) во фракцию осадка, нерастворимого в холодной ТХУ. Для проверки были взяты XSA, а также эти же соединения, которые инкубировались с MccENTD (XSA+АцКoA+MccENTD). За 100% было принято количество аминоацил-тРНК, образуемое в отсутствии инкубации с каким-либо из соединений (контроль).

На основании результатов наших экспериментов, выполненных с использованием AspSA аналога процессированного МсС, можно заключить, что С-концевой домен МссE является ацетилтрансферазой, которая переносит ацетильную группу на NH2–группу остатка Asp процессированного МсС, и что ацетилированная форма антибиотика не ингибирует клеточную мишень - AspRS. Мутации, приводящие к снижению ацетилтранcферазной активности MccE, приводят к чувствительности клеток к антибиотику.

3. Cистема транспорта МсС Механизм действия МсС предполагает, что появление устойчивости к антибиотику может быть обусловлено тремя типами мутаций - нарушениями транспорта МсС, его процессинга, а также повреждениями гена, кодирующего фермент-мишень.

Поскольку AspRS - жизненно важный фермент, то мутации в гене, кодирующем мишень, скорее всего, будут для клетки летальными. Однако не исключено, что мутации в регуляторной последовательности этого гена, например, повышающие его экспрессию, могут повлиять на уровень устойчивости. Действительно, было показано, что сверхпродукция AspRS приводит к устойчивости клеток к действию МсС 5.

Получение мутаций устойчивости, связанных с нарушением процессинга МсС маловероятно, так как в деградации пептидной части молекулы участвуют несколько взаимозаменяемых клеточных пептидаз. Было обнаружено, что клетки, лишённые одновременно трёх генов, кодирующих пептидазы широкой специфичности PepA, PepB и PepN, устойчивы к антибиотику.

Наконец, устойчивость к McC может возникать вследствие нарушения проникновения его в клетку. В предварительных исследованиях, проведенных в лаборатории И. А. Хмель, была проверена коллекция штаммов E. coli с мутациями различных компонентов транспортных систем. Было показано, что, одним из белков, участвующим в транспорте МсС в периплазму, является OmpF 6, так как клетки, несущие мутацию в этом гене, были частично устойчивы к антибиотику. Однако вопрос о системе, необходимой для транспорта антибиотика в цитоплазму, оставался неисследованным.

Для идентификации системы транспорта МсС была использована библиотека клеток E.

coli SG289, несущих случайные инсерции транспозона TNSC189 7, - SG289(Tn) (была любезно предоставлена Sean Garrity (Harvard Medical School, США)). Инсерция транспозона делает клетки SG289(Tn) устойчивыми к канамицину (Km).

Отбор клеток E. coli, устойчивых к McС, и проверка сцепленности устойчивости к Km и МсС. Из библиотеки клеток SG289(Tn) были отобраны 7 независимых колоний, устойчивых к МсС. Для экспериментального доказательства того, что устойчивость к МсС отобранных колоний действительно вызвана инсерцией транспозона, были проведены опыты по трансдукции фагом Р1vir. Для каждого из 7 штаммов было получено 10-20 колоний-трансдуктантов, устойчивых к Кm. Наличие инсерции транспозона у полученных трансдуктантов TnSC289 было подтверждено методом ПЦР. Все трансдуктанты были устойчивы к МсС (ко-трансдукция – 100%). Таким образом, можно заключить, что устойчивость к МсС у исследуемых колоний, действительно, обусловлена вставкой транспозона.

Определение нуклеотидной последовательности в районе вставки транспозона. Одним из ключевых моментов данной работы части было определение генов, в последовательность Metlitskaya, A., Kazakov T., Kommer A., Pavlova O., Praetorius-Ibba M., Ibba M., Krasheninnikov I., Kolb V., Khmel I., and Severinov K. 2006. Aspartyl-tRNA Synthetase is the target of peptide nucleotide antibiotic microcin C. J. Biol. Chem. 281: 18033-18042.

Khmel, I. A., V. M. Bondarenko, I. M. Manokhina, E. I. Basyuk, A. Z. Metlitskaya, V. A. Lipasova, and Y. M.

Romanova. 1993. Isolation and characterization of Escherichia coli strains producing microcins of B and C types.

FEMS Microbiol Lett. 111: 269-74.

Chiang S.L. & Rubin E.J. 2002. Construction of a mariner-based transposon for epitope-tagging and genomic targeting. Gene 296: 179-185.

которых произошла инсерция транспозона. Определение локализации транспозона проводили с помощью метода ПЦР с одним праймером в реакционной смеси и со сменой температур отжига праймера в течение опыта8. Было установлено, что у пяти трансдуктантов вставка транспозона произошла в различные места гена yejA, а у двух трансдуктантов 1 и 6 - в ген yejB. Оба этих гена находятся в составе оперона yejАBEF. На основании данных биоинформатического анализа можно утверждать, что гены оперона yejABEF кодируют белки олигопептидного транспортёра ABC-семейства: продукт гена yejА - это периплазматический белок, отвечающий за связывание субстрата, YejB и YejE – трансмембранные белки, а YejF - белок, обладающий АТФ-азной активностью. Данных о специфичности транспортной системы YejABEF не имеется.

yej мутанты, полученные методом направленного мутагенеза, устойчивы к МсС и к его синтетическим аналогам, но чувствительны к аналогам процессированного МсС. Методом направленного мутагенеза9 в лаборатории д. Wanner (Purdue University, США) были получены четыре штамма E. сoli, не содержащие генов yejA, yejB, yejE или yejF, и нами была определена их чувствительность к МсС. Оказалось, что все эти штаммы устойчивы к антибиотику (Рис. 7). В экстрактах клеток каждого из мутантов - yejA, yejB, yejE и yejF - так же, как в экстрактах клеток дикого типа, наблюдалось полное ингибирование реакции аминоацилирования тРНКAsp при добавлении МсС (Рис. 8), что указывает на то, что и процессинг МcС и фермент-мишень остались неизмененными. Таким образом, продукты генов оперона yejABEF действительно необходимы для обеспечения чувствительности клеток к МсС и, скорее всего, действуют на стадии проникновения антибиотика в клетку.

Нами была проверена устойчивость yej мутантов к химическим аналогам зрелого МсС и соответствующим аналогам процессированного МсС (синтетические аналоги МсС содержат остатки Asp, Leu или Glu в 7 положении гептапептида и ингибируют соответствующие аминоацил-тРНК-синтетазы;

кроме того, в структуре этих соединений отсутствует аминопропильная группа (Рис. 1 д)). В качестве контроля использовались клетки дикого типа. Из рис. 9 видно, что клетки чувствительны ко всем аналогам процессированного МсС, но устойчивы к синтетическим аналогам МсС.

На основании полученных данных можно заключить, что YejABEF необходим для транспорта МсС и его аналогов, но не участвует в транспорте аналогов процессированного МсС.

Природа аминокислоты в 7-ом положении гептапептида не важна для узнавания транспортёром.

Ducey, T. F. & D. W. Dyer. 2002. Rapid identification of EZ:TN™ transposon insertion sites in the genome of Neisseria gonorrhoeae. EPICENTRE Forum 9:6–7.

Datsenko, K.A. & Wanner B. L. 2000. One-step inactivation of chromosomal genes in Escherichia coli K- using PCR products. PNAS 97:6640-6645.

Рисунок 7. Рост клеток yejA в жидкой среде в присутствии зрелого МсС (10 мкг/мл). За скоростью роста клеток следили по увеличению оптической плотности среды при 600 нм (OD600). В качестве контроля использовали клетки дикого типа (дт). Аналогичная картина наблюдалась и для клеток yejB, yejE и yejF.

Рисунок 8. Реакция аминоацилирования в экстрактах клеток, мутантных по генам оперона YejABEF. S30 экстракты клеток инкубировали с интактным МсС в течение 1 часа (времени, достаточного для процессинга) при 37 °С, после чего в эту смесь добавляли компоненты для реакции аминоацилирования, включая радиоактивную аминокислоту Asp. Количество образовавшейся аминоацилированной тРНКAsp измеряли по включению радиоактивной метки во фракцию осадка, нерастворимого в холодной ТХУ.

а) [X]-AspSA [X]-LeuSA Зона ингибирования (мм ) [X]-GluSA 2 McC AspSA LeuSA GluSA 1 10 100 1000 [X] = MRTGNA Концентрация (µM) б) McC [X]-AspSA Зона ингибирования (мм ) [X]-LeuSA [X]-GluSA AspSA LeuSA GluSA 1 10 100 [X] = MRTGNA Концентрация (µM) Рисунок 9. Проверка устойчивости клеток дикого типа (а) и yejA (б) к аналогам зрелого МсС и аналогам процессированного МсС. На газон клеток были нанесены растворы тестируемых соединений и после инкубации в течение нескольких часов измерены диаметры ингибирования зон роста. Аналогичная картина наблюдалась и для культур клеток yejB, yejE и yejF.

Предсказание функций продуктов генов оперона yejABEF методами биоинформатики. Для получения дополнительной информации об опероне yejABEF был проведён биоинформатический анализ аминокислотных последовательностей YejA и YejB. Поскольку периплазматические белки известных олигопептидных транспортёров суперсемейства схожи с ABC периплазматическими белками ABC-транспортёров ионов никеля, было построено общее филогенетическое дерево периплазматических белков семейства АВС-транспортёров, отвечающих за транспорт олигопептидов и ионов никеля Анализ (включая Yej).

филогенетического дерева показал, что YejA и его гомологи лежат на отдельной ветке.

Анализ филогенетических деревьев, построенных на основании аминокислотных последовательностей гомологов YejA и YejB позволил выявить белки, имеющие с ними общее эволюционное происхождение. В исследованных геномах гомологи YejA, как правило, соседствуют с гомологами YejB, и предположительно входят в состав одного оперона. Структура содержащего эти гены локуса в целом консервативна в пределах типа Proteobacteria и включает, помимо гомологов генов yejA и yejB, гомологи генов yejE и yejF.

Предполагалось, что бактерии, которые содержат оперон yej в геноме, должны быть чувствительны к действию МсС. Однако, несмотря на то, что Pseudomonas aeruginosa PAO имеет два оперона, кодирующих транспортные системы, родственные комплексу Yej, этот организм оказался устойчивым к микроцину (Н. Курепина, личное сообщение). Мы предполагаем, что поскольку AspRS – высоко консервативный фермент у бактерий и система клеточных пептидаз, в целом, консервативна, то устойчивость должна быть связана со свойствами транспортной системы. Поэтому устойчивость к МсС Pseudomonas может быть объяснена как изменениями специфичности транспортёра к МсС, так и низким уровнем экспрессии оперонов yej в данном штамме. Также возможно, что на транспорт МсС влияют другие, в настоящее время неизвестные рецепторные системы внешней мембраны.

Таким образом, в результате исследования были обнаружены и идентифицированы мутации, приводящие к устойчивости к МсС. Картирование мутаций методом однопраймерной ПЦР показало, что у отобранных нами мутантов устойчивость к МсС определяется повреждением генов АВС транспортёра, расположенного во внутренней (цитоплазматической) мембране бактериальной клетки. Гены, кодирующие четыре субъединицы транспортёра,– периплазматический белок (YejA), два трансмембранных белка (YejB и YejE) и белок, обладающий АТФ-ной активностью, (YejF) (на основании данных биоинформатического анализа) - находятся в опероне yejABEF. Опыты по проверке устойчивости к МсС клеток, лишённых отдельных генов оперона yejABEF, показали, что каждый из белков транспортёра необходим для транспорта МсС.

Механизм транспорта и структура комплекса YejABEF неизвестны. Однако есть ряд экспериментальных данных, указывающих на его функцию в клетке. Так, для патогенных штаммов Salmonella enterica показано, что мутации в yej понижают их вирулентность и повышают чувствительность к антимикробным пептидам10. Предполагают, что Yej участвует в транспорте иммуногенных бактериальных пептидов, тем самым, снижая вероятность их взаимодействия с комплексом MHC I, а также транспортирует антимикробные пептиды для их деградации в цитоплазме клетки.

Eswarappa, S. M., Panguluri K. K., Hensel M., Chakravortty D. 2008. The yejABEF operon of Salmonella confers resistance to antimicrobial peptides and contributes to its virulence. Microbiology 154: 666-678.

На основе вышеуказанных данных и данных биоинформатического анализа можно предположить, что основная функция этого транспортера связана с транспортом олигопептидов.

Но вопрос о специфичности транспортера требует дополнительных исследований.

ВЫВОДЫ 1. Продукты генов mccD и mccE микроцинового оперона mccABCDE отвечают за присоединение аминопропильной группы к гептапептид-нуклеотиду МсС.

2. Наличие аминопропильной группы в составе зрелого МсС приводит к увеличению антибактериальной активности соединения за счёт повышения сродства к белку-мишени AspRS.

3. MccE является частью системы, обеспечивающей устойчивость клеток к МсС. С-концевой домен этого белка является ацетилтрансферазой, которая переносит ацетильную группу на процессированный МсС, и такая модифицированная форма антибиотика не ингибирует AspRS. Ацетилтрансферазная активность МссЕ не важна для синтеза антибиотика.

4. АВС-транспортёр YejABEF - это единственный комплекс белков внутренней мембраны E.

coli, ответственный за транспорт МсС через цитоплазматическую мембрану в цитоплазму клетки. Мутации в каждом из генов оперона yejABEF приводят к устойчивости к МсС.

СПИСОК РАБОТ, ОПУБЛИКОВАННЫХ ПО ТЕМЕ ДИССЕРТАЦИИ Статьи в научных журналах:

1. Metlitskaya, A., Kazakov T., Vondenhoff G. H., Novikova M., Shashkov A., Zatsepin T., Semenova E., Zaitseva N., Ramensky V., Van Aerschot A., and Severinov K. 2009. Maturation of Translation Inhibitor Microcin C. J Bacteriol. 191: 2380-7.

2. Kazakov, T., Vondenhoff G.H., Datsenko K.A., Novikova M., Metlitskaya A., Wanner B.L., Severinov K. 2008. Escherichia coli peptidase A, B, or N can process translation inhibitor microcin C. J Bacteriol. 190: 2607-10.

3. Novikova, M., Metlitskaya A., Datsenko K., Kazakov T., Kazakov A., Wanner B., Severinov K.

2007. The Escherichia coli Yej Transporter Is Required for the Uptake of Translation Inhibitor Microcin C. J Bacteriol. 189: 8361- 8365.

Тезисы конференций:

1. Novikova, M., Metlitskaya A. Z., Kazakov, T. S., Datsenko K., Vondenhoff G.H., Severinov K.

Microcin C: biosynthesis, transport, processing of the translation inhibitor. 3rd Congress of European Microbiologists: «Microbes and Man – interdependence and future challenges», Gothenburg, Sweden, June 28 - July 2, 2009.

2. Новикова М. В., Метлицкая А. З., Казаков Т. С., Vondenhoff G. H., Северинов К. В.

Разработка нанолекарств на основе антибактериального пептида микроцина С. IV Российский симпозиум «Белки и пептиды», Казань, Россия, 23 – 27 июня 2009.

3. Novikova, M., Metlitskaya A. Z., Kazakov, T. S., Vondenhoff G.H., Severinov K. Dissecting the functions of the products of microcin C biosynthetic operon. VIII European Symposium of The Protein Society, Zurich, Switzerland June 14-18, 2009.

4. Novikova, M., Metlitskaya A. Z., Kazakov, T. S., Vondenhoff G.H., Severinov K. Microcin C:

transport, biosynthesis and mechanism of action. FEBS Practical Course on Protein interaction modules, Split, Croatia, April 18 - 25, 2009.

5. Новикова М. В., Метлицкая А. З., Казаков Т. С., Vondenhoff G. H., Северинов К. В.

Микроцин С: биосинтез, транспорт и механизм действия. «IV съезд Российского общества биохимиков и молекулярных биологов», Новосибирск, Россия, 11 – 15 мая, 2008.

6. Novikova, M., Metlitskaya A., Datsenko K., Kazakov T., Kazakov A., Severinov K. The Escherichia coli ABC Transporter Yej Is Required for the Uptake of Antibiotic Microcin C.

2008. ATP-Binding Cassette (ABC) Proteins: From Multidrug Resistance to Genetic Diseases, Innsbruck, Austria, March 1-8, 2008.



 

Похожие работы:





 
2013 www.netess.ru - «Бесплатная библиотека авторефератов кандидатских и докторских диссертаций»

Материалы этого сайта размещены для ознакомления, все права принадлежат их авторам.
Если Вы не согласны с тем, что Ваш материал размещён на этом сайте, пожалуйста, напишите нам, мы в течении 1-2 рабочих дней удалим его.