авторефераты диссертаций БЕСПЛАТНАЯ  БИБЛИОТЕКА

АВТОРЕФЕРАТЫ КАНДИДАТСКИХ, ДОКТОРСКИХ ДИССЕРТАЦИЙ

<< ГЛАВНАЯ
АГРОИНЖЕНЕРИЯ
АСТРОНОМИЯ
БЕЗОПАСНОСТЬ
БИОЛОГИЯ
ЗЕМЛЯ
ИНФОРМАТИКА
ИСКУССТВОВЕДЕНИЕ
ИСТОРИЯ
КУЛЬТУРОЛОГИЯ
МАШИНОСТРОЕНИЕ
МЕДИЦИНА
МЕТАЛЛУРГИЯ
МЕХАНИКА
ПЕДАГОГИКА
ПОЛИТИКА
ПРИБОРОСТРОЕНИЕ
ПРОДОВОЛЬСТВИЕ
ПСИХОЛОГИЯ
РАДИОТЕХНИКА
СЕЛЬСКОЕ ХОЗЯЙСТВО
СОЦИОЛОГИЯ
СТРОИТЕЛЬСТВО
ТЕХНИЧЕСКИЕ НАУКИ
ТРАНСПОРТ
ФАРМАЦЕВТИКА
ФИЗИКА
ФИЗИОЛОГИЯ
ФИЛОЛОГИЯ
ФИЛОСОФИЯ
ХИМИЯ
ЭКОНОМИКА
ЭЛЕКТРОТЕХНИКА
ЭНЕРГЕТИКА
ЮРИСПРУДЕНЦИЯ
ЯЗЫКОЗНАНИЕ
РАЗНОЕ
КОНТАКТЫ


Pages:   || 2 |
-- [ Страница 1 ] --

ПРАВИТЕЛЬСТВО МОСКВЫ, КОМИТЕТ ПО КУЛЬТУРЕ

ЕВРОАЗИАТСКАЯ РЕГИОНАЛЬНАЯ АССОЦИАЦИЯ ЗООПАРКОВ И

АКВАРИУМОВ

МОСКОВСКИЙ ЗООЛОГИЧЕСКИЙ ПАРК

ГРУППА

КОМПАНИЙ «АКВА ЛОГО»

представляют

Межведомственный сборник

научных и научно-методических трудов

ПРОБЛЕМЫ АКВАКУЛЬТУРЫ

Материалы 7-й Международной

научно-практической конференций по аквариологии

Москва, 5-6 февраля 2010 г.

Выпуск 5 Москва, 2011 УДК [597.6/599:639.1.04]:59.006 Проблемы аквакультуры. Вып. 5. Мат. 7-й Междунар. науч.-практ. конф.

по аквариологии. Москва 5-6 февраля, 2010 г. //Межвед. сб. науч. и науч. метод. тр. - М.: Московский зоопарк. Группа компаний «Аква Лого». 2010.

Настоящий сборник трудов создан по материалам 7-й Научно практической конференции по аквариологии, проведенной совместно ЕАРАЗА и ООО «Аква Лого» в 2010 году в Москве. В него включены оригинальные статьи по биологии, поведению и физиологии рыб и других гидробионтов, а также по вопросам кормления, лечения и профилактики заболеваний, устройству и оборудованию аквариумов. Затронуты проблемы охраны и рационального использования природных водных сообществ. Сборник рассчитан как на профессионалов, так и на любителей содержания рыб и других водных животных.

Под общей редакцией генерального директора Московского зоопарка, Президента ЕАРАЗА, члена-корреспондента РАЕН В.В. Спицина Редакционная коллегия:

Т.Ф. Андреева, Т.А. Вершинина, А.Л. Казакевич, докт. биол. наук, проф. В.А. Остапенко, А.В. Привезенцева, А.В. Телегин, Н.В. Сафонов Информационный центр ЕАРАЗА (ZIC EARAZA) 123242 Россия, Москва, Большая Грузинская, 1.

Тел./факс: (499) 255 63 64.

E-mail: earaza_inf@mtu-net.ru Тираж на электронном носителе информации: 300 экз.

© Московский зоопарк © Группа компаний «Аква Лого»

  ОГЛАВЛЕНИЕ:

К читателю…………………………………………………………………..….. Баженова К.Н., Дмитриева Е.Ю. Оценка гигиенического состояния пресноводных и морских крупнотоннажных аквариумов на основании содержания колиформных бактерий………………………………………….. Борисов Р.Р., Лебедев Р.О., Паршин-Чудин А.В. Возможность использования лекарственных препаратов в работах по культивированию камчатского краба (Paralithodes camtschaticus) …………………………….. Глызина О.Ю., Черногор Л.И., Деникина Н.Н., Белых О.И., Сапожникова Ю.В., Любочко С.А. «Пресноводный аквариумный комплекс»

Лимнологического института Сибирского Отделения Российской Академии Наук……………………………………………......………………. Гуржий А.Н. Сухопутные раки-отшельники. Личный опыт………………. Гуржий А.Н. «Питьевой гель» для беспозвоночных………………..……… Желанкин Р.В. Стимуляция и коррекция иммунитета рептилий при содержании их в неволе……………………………………………………… Желанкин Р.В., Пчелин В.М., Демидова Е.В., Павлов Г.В. Действие нанодисперсных порошков железа, меди, селена на рост и развитие пресноводных рыб…………………………………………………….……… Ковалев К.В., Грунина А.С., Рекубратский А.В., Цветкова Л.И. Система методов биологии развития для использования в программах по сохранению и восстановлению популяций и видов осетровых рыб………………………………………………………………………….….. Кочетов С. М. Несколько слов о фильме «Красота аквариума»…….….…. Уразаева Р.Д. Уход за аквариумом………………………………………….. И.С. Щелкунов, В.Н. Воронин, Е.В. Кузнецова. Герпесвирусная болезнь карпа кои: ситуация в мире и риск интродукции в Россию ….….….…...… Юнчис О.Н. О двух бактериальных болезнях коньков….….….….….….…   Юрченко С.В. Фауна Красного Моря в естественных условиях. От Дахаба до Забаргада………………………………………………………………..…   Дорогие коллеги!

В настоящее время в России наряду с любительской, стремительно развивается профессиональная крупнотоннажная аквариумистика. Во многих крупных городах появляются океанариумы. Совершенствуются пресноводные и морские аквариумы, системы жизнеобеспечения их обитателей. Разведение и кормление водных животных, профилактика заболеваний и лечение обитателей аквариумов остаются актуальными темами исследований специалистов.

Изучаются проблемы сохранения рифовых и других морских, а также пресноводных сообществ при их использовании с целью развития аквариумного дела.

Накопленный отдельными учреждениями и любителями опыт аквакультуры необходимо систематизировать и сделать доступным для специалистов, работающих в данной области, любителей-аквариумистов, серьезным образом занимающихся этими проблемами. С этой целью Группа компаний «Аква Лого» совместно с Евроазиатской региональной ассоциацией зоопарков и аквариумов (ЕАРАЗА) организовывает ежегодные Научно-практические конференции по аквариологии.

Настоящий сборник трудов включает материалы конференции, прошедшей в 2010 году в Москве. В сборнике отражены наиболее интересные результаты исследований в области ухода за аквариумом, описаны особенности документальной видеосъёмки аквариумов и их обитателей.

Даны описания устройства комплекса экспериментальных аквариумов с возможностью проведения исследований по биологии и физиологии различных водных животных и растений. Отражен опыт содержания гидробионтов в экспериментальных условиях. В сборник включены оригинальные материалы по вопросам кормления, лечения и профилактики заболеваний гидробионтов, а также по микробиологической безопасности аквариумов. В сборник также вошли статьи по методам сохранения биоразнообразия осетровых рыб, содержания амфибий и рептилий.

Наконец, даны подробные описания биотопов коралловых рифов Красного моря с великолепными подводными фотографиями. Сборник рассчитан как на профессионалов, так и на любителей содержания рыб и других водных животных.

В этом году сборник материалов конференции выходит в электронной форме на оптическом носителе, что позволяет не только удобно читать опубликованные тексты, но и смотреть фото и видео приложения к докладам.

Редакционная коллегия надеется, что наш опыт подобного издания будет продолжен. Мы приглашаем авторов участвовать в следующих научно практических конференциях и готовить материалы будущих публикаций.

Редколлегия   ОЦЕНКА ГИГИЕНИЧЕСКОГО СОСТОЯНИЯ ПРЕСНОВОДНЫХ И МОРСКИХ КРУПНОТОННАЖНЫХ АКВАРИУМОВ НА ОСНОВАНИИ АНАЛИЗА СОДЕРЖАНИЯ КОЛИФОРМНЫХ БАКТЕРИЙ 1, К.Н. Баженова, 2 Е.Ю. Дмитриева Океанариум ООО «Планета Нептун» г. Санкт-Петербург1, Санкт-Петербургский Государственный Университет В руководствах по аквариумистике часто уделяется внимание технике безопасности, главным образом это касается вопросов работы с многочисленным аквариумным оборудованием, т.е. электробезопасности.

При этом не менее важный аспект, такой, как микробиологическая безопасность, остается незатронутым. Данная работа посвящена проблеме санитарно-гигиенического состояния воды аквариумов и связанным с этим риском для здоровья человека.

В настоящее время в России наряду с любительской, стремительно развивается профессиональная крупнотоннажная аквариумистика. Во многих крупных городах появляются океанариумы.

Обслуживание подобных объектов осуществляется аквариумистами и зачастую требуется введение в штат океанариума профессиональных водолазов, которые ежедневно совершают погружения для обслуживания крупных аквариумов.

Водная среда больших аквариумов с многочисленными обитателями, также как и вода природных поверхностных водоемов при купании, плавании или занятии дайвингом, характеризуется рядом микробиологических «рисков».

В естественных водоемах, в первую очередь пресноводных, в прибрежной зоне сильно ощущается микробиологическое загрязнение в результате сброса необеззараженных бытовых и канализационных стоков.

Опасность таких сбросов состоит в том, что канализационные стоки содержат значительное количество микроорганизмов-возбудителей кишечных заболеваний (бактерий и вирусов). Эти патогены попадают в стоки из пищеварительного тракта людей и животных-носителей.

  В настоящее время отмечается тенденция увеличения количества людей-носителей патогенов, возрастает вероятность заражения мест купания, водозаборных зон. Опасные инфекции, уносившие когда-то тысячи жизней, такие как холера, дизентерия, брюшной тиф, сейчас все чаще проходят у большинства людей в мягкой, стертой форме и не вызывают серьезного опасения даже у заболевшего человека. После такой легкой формы заболевания наиболее вероятно формирование носительства, когда внешне здоровый человек или животное становится источником заражения патогенными микроорганизмами внешней среды через свои экскременты и грязные руки, а некоторые люди и даже носители инфекции могут подвергаться опасности заболеть.

Все осложняется тем, что некоторые возбудители кишечных инфекций (кишечные палочки, сальмонеллы, листерии), при попадании в воду не погибают, а постепенно приспосабливаются к сапрофитному образу жизни, поселяются на поверхности водных объектов, в кишечнике животных. Таким образом, водные животные: рыбы, моллюски, креветки, кораллы и др. – также являются носителями болезнетворных микроорганизмов.

Купание, погружение, случайное, даже незначительное попадание воды в рот может стать причиной заражения людей кишечными инфекциями. По этой причине служба Роспотребнадзора осуществляет контроль за микробиологической безопасностью и санитарно гигиеническим состоянием зон купания, часто из-за превышения допустимых пределов по микробиологическим показателям безопасности запрещает купание на некоторых пляжах.

Аналогичный вид микробиологической опасности формируется в аквариумах, особенно крупнотоннажных, в которые погружаются водолазы, производится обслуживание аквариумистами. В данном случае возникновение этой опасности формируется другим путем.

Действительно, большой аквариум с его обитателями не контактирует с внешней средой и канализационными стоками. Только персонал, опускающий в него руки или погружающийся в аквариум, способен принести из внешней среды на руках, костюме, инвентаре, казалось бы, незначительное количество кишечных бактерий.

Таким образом, мы, люди, работающие с водными животными, являемся связующим звеном между аквариумом с его обитателями и   внешней средой – мегаполисом с его общественными туалетами и ужасающими сточными канализационными реками.

Также возможно внесение болезнетворных микроорганизмов в аквариум с кормом и новыми гидробионтами, особую опасность здесь представляют кораллы и живые камни, поскольку часто на них содержится широкий спектр условно-патогенных бактерий.

Кроме того, известно, микрофлора гидробионтов соответствует микрофлоре водной среды, так что попадание патогенов в аквариум, в замкнутую систему, может формировать носительство у объектов аквариумистики и заражение персонала. Поэтому силами сотрудников океанариума ведется контроль безопасности воды на уровне требований, предъявляемых к открытым водоемам рекреационного типа. Основным руководящим документом служат Санитарные Нормы и Правила (СанПиН) 2.1.5.980-00 «Водоотведение населенных мест, санитарная охрана водных объектов. Гигиенические требования к охране поверхностных вод».

Основным показателем микробиологической безопасности воды рекреационных водоемов в соответствии с указанным документом является содержание колиформных бактерий в пределах КОЕ/100 мл = 500 (это международно-признанный санитарно-гигиенический показатель, которым широко пользуются все страны для оценки микробиологической безопасности воды и пищевых продуктов). Колиформные бактерии – это кишечные бактерии, которые имеются у каждого человека, у теплокровных и даже иногда у холоднокровных водных животных. Их присутствие в воде выше допустимого предела косвенно указывает на высокую вероятность фекального загрязнения, т.е. загрязнения энтеробактериями и вирусами.

Кроме того, высока вероятность, что при повышенном содержании колиформных бактерий в воде также возможно увеличение содержания и других, опасных для человека бактерий, таких как различные вибрионы, синегнойная палочка и др.

Помимо кишечных инфекций через воду обслуживающий персонал может столкнуться и с другими возбудителями заболеваний, перечень некоторых из них представлен в таблице.

  Таблица. Заболевания и их возбудители, передаваемые через воду Заболевание Возбудитель 1.Заболевания, обусловленные проникновением возбудителя в ЖКТ Кишечные инфекции, - Колиформные бактерии гастроэнтериты и пр. (бактерии родов Enterobacter,Citrobacter, Escherichia) - Бактерии рода Vibrio (V.

cholerae, V. vulnificus, V.

parahaemolyticus, V. fluvialis, V.

hollisae, V. mimicus) Сальмонеллез - Salmonella sp.

Ботулизм - Clostridium botulinum 2. Заболевания, обусловленные проникновением возбудителя через поврежденные кожные покровы – раневые инфекции Cептицемии, бактериемии, - Синегнойная палочка гангрены и пр. (Pseudomonas aeruginosa) - Бактерии рода Vibrio (V.

vulnificus, V. parahaemolyticus, V.

alginolyticus, V. furnishhi, V.

fluvialis, V. harveyi, V. hollisae, V.

mimicus и др.) Лептоспироз - Leptospira sp.

Целлюлит - V. mimicus Столбняк - Clostridium tetani Заболевание Возбудитель Рожистое воспаление - Streptococcus pyogenes 3. Заболевания, обусловленные проникновением возбудителя через носоглотку   Отит - Синегнойная палочка (Pseudomonas aeruginosa) - V.a lginolyticus, V. mimicus, V.

vulnificus Менингит - V. cincinnatiensis, V. vulnificus Из представленных в таблице данных видно, что все заболевания можно разделить на три группы:

1. Заболевания, обусловленные проникновением возбудителя в ЖКТ – к ним, помимо кишечных инфекций, относятся гастроэнтериты, сальмонеллез, холера, ботулизм. Возбудителем перечисленных инфекций являются колиформные бактерии, представители рода Vibrio, Salmonella, Clostridium botulinum.

2. Заболевания, обусловленные проникновением возбудителя через поврежденные кожные покровы, т.е. раневые инфекции. К данной категории относятся септицемии, гангрены, лептоспироз, рожистое воспаление и даже целлюлит. Причины перечисленных заболеваний разнообразны: синегнойная палочка, лептоспира, представители Vibrio, инфекционные стрептококки.

3. Заболевания, обусловленные проникновением возбудителя через носоглотку – это отиты и менингиты, причиной которых являются уже упомянутые синегнойная палочка и некоторые виды рода Vibrio.

Таким образом, очевидно, что работа с таким обычно не вызывающим опасений объектом, как аквариум, весьма небезопасна.

Обслуживание аквариумов требует соблюдения определенных мер и техники безопасности.

В нашем Океанариуме показатель «колиформы» контролируется для крупных морских и пресноводных аквариумов на протяжении уже нескольких лет и накоплен достаточный материал для анализа ситуации.

Давно стало ясно, что замкнутая система аквариума с его системой очистки далеко не всегда способна быстро освободить воду от кишечных бактерий, поступающих с экскрементами животных и заносимых персоналом. Соблюдать санитарные показатели в пресноводных   аквариумах – наиболее трудная задача. Чтобы снизить численность колиформных бактерий до установленного предела и не повредить биофильтры требуется оптимизировать систему озонирования и УФ обработки воды, работа которых ежедневно контролируется при помощи ORP показателей и еженедельных анализов на содержание колиформ.

Литература Беркли Р. И. и др. Определитель бактерий Берджи. 1997 – М.: Мир.

Общая и санитарная микробиология с техникой микробиологических исследований // под ред. А.С. Лабинской и др. 2004. – М.: Медицина.

Водоотведение населенных мест, санитарная охрана водных объектов.

Гигиенические требования к охране поверхностных вод. // Санитарные Нормы и Правила (СанПиН) 2.1.5.980-00.

Buller N. Bacteria from Fish and Other Aquatic Animals // CABI Publishing, 2004.

Nyholm V., Stabb V., Rube G. Establishment of an animal-bacterial association: recruiting symbiotic vibrios from the environment // 2000, V.

97, № 18.

Pace J., Chai T. Comparison of Vibrio parahaemolyticus grown in estuarine water and rich medium // App. and env. Microbiol. 1989, V. 55, № 8.

  ВОЗМОЖНОСТЬ ИСПОЛЬЗОВАНИЯ ЛЕКАРСТВЕННЫХ ПРЕПАРАТОВ В РАБОТАХ ПО КУЛЬТИВИРОВАНИЮ КАМЧАТСКОГО КРАБА (PARALITHODES CAMTSCHATICUS) Р.Р. Борисов, Р.О. Лебедев, А.В. Паршин-Чудин Всероссийский научно-исследовательский институт рыбного хозяйства и океанографии, г. Москва Введение Камчатский краб Paralithodes camtschaticus (Tilesius, 1815) также как и многие другие морские представители отряда Decapoda в своем развитии проходит стадию планктонной личинки зоэа (рис. 1.А), которая внешне мало похожа на взрослую особь.

Рис. 1. Внешний вид зоэа II (А) и глаукотоэ (Б) камчатского краба.

Продолжительность планктонного периода в естественной среде составляет 2-3 месяца, а в искусственных условиях при температуре 8оC около месяца. Всего за этот период личинка камчатского краба линяет три   раза и проходит четыре стадии зоэа, зоэа IV линяет на следующую в жизненном цикле стадию – глаукотоэ (рис. 1.Б).

Глаукотоэ уже гораздо больше похожа на взрослую особь, но может подниматься в толщу воды, используя плеоподы. Основной функцией глаукотоэ является поиск подходящего субстрата для оседания, и за все время своего существования (при температуре 8оC это около трех недель) она не питается. Зоэа и глаукотоэ – самые уязвимые и чувствительные к условиям окружающей среды стадии в жизненном цикле камчатского краба.

На данный момент в литературе отсутствуют данные о применении каких-либо лекарственных препаратов при выращивании личинок камчатского краба и неизвестно, какое действие могут оказывать на личинок препараты уже широко используемые в аквакультуре. В качестве первых шагов для решения этих вопросов нами было проведено исследование, имевшее целью выяснить принципиальную возможность использования препаратов антибактериального и более широкого спектра действия при выращивании личинок камчатского краба.

Методика В 2008-2009 гг. в лаборатории воспроизводства и культивирования ракообразных Всероссийского научно-исследовательского института рыбного хозяйства и океанографии (ВНИРО) нами проведены работы по изучению влияния лекарственных препаратов на личинок камчатского краба. Испытаны препараты производства ООО "Научно-Внедренческий Центр Агроветзащита" "Антибак" (основное действующее вещество:

ципpoфлoкcaцин (Ciprofloxacinum) антибактериальный препарат из группы фторхинолонов II поколения), антибактериальный иммунизирующий препарат широкого спектра действия, и "Антипар" (основные компоненты:

малахитовый зеленый (C23H25ClN2), метиленовый синий (C16H18CIN3S*H2O), стабилизированный формалин (CH2O, в качестве стабилизатора чаще всего используется метиловый спирт), комплексный препарат широкого спектра действия для лечения эктопаразитарных, грибковых, бактериальных и инвазионных болезней. Оба препарата активно используются при лечении рыб. По данным производителя "Антибак" по степени токсического воздействия на организм относится к малоопасным веществам для теплокровных (4 класс опасности по ГОСТ 12.1.007-76) и рыб, а "Антипар" по отношению к рыбам, обладает минимальным уровнем токсичности.

  Существует ряд работ, в которых рассматривается влияние ципpoфлoкcaцина на ракообразных (Fang et al., 2007;

Wu et al., 2006).

Малахитовый зеленый, метиленовый синий, формалин, входящие в состав "Антипара", используются в аквакультуре ракообразных (McVey, 1993;

Speare et al., 1996;

Boghen, 2006;

Мицкевич, 2006 и др.).

В первом эксперименте оценивали выживаемость личинок при применении трех концентраций препаратов в течение суток. В емкости (объемом 0,8 л) высадили по 40 личинок стадии зоэа II. Концентрация препарата в экспериментальных емкостях с добавлением "Антибака": 1, ед./л, 2,5 ед./л и 5 ед./л и 0 ед./л в контроле и "Антипара" составила: 0, мл/л, 0,02 мл/л, 0,04 мл/л и 0 мл/л в контроле. Выбранные концентрации препаратов составляют 0,5, 1 и 2 от концентраций рекомендуемых производителем для лечебных мероприятий. Каждый вариант эксперимента выполнен в трех повторностях. В качестве корма использовали живые науплии артемии из расчета 600-800 экз./л. Спустя сутки во всех емкостях, включая контроль, провели полную замену воды (свежая вода не содержала лекарственных препаратов) и определили число погибших личинок. Еще через сутки повторно определили число живых и погибших личинок. Также на протяжении эксперимента отмечали наличие экзувиев (шкурок, сброшенных личинками во время линьки на третью стадию зоэа).

Во втором эксперименте оценивали выживаемость личинок при длительном (5 суток) применении препаратов в концентрациях рекомендуемых производителем. В емкости (объемом 0,8 л) высадили по 40 личинок стадии зоэа IV. Поставлено три варианта экспериментальных емкостей: "Антибака" – с концентрацией 2,5 ед./л, "Антипара" – с концентрацией 0,02 мл/л и контроль. Каждый вариант эксперимента выполнен в пяти повторностях. В емкостях ежедневно проводили смену воды, вносили корм, определяли число перелинявших на стадию глаукотоэ и количество погибших особей, оценивали причины гибели. Концентрации "Антибака" и "Антипара" поддерживали в емкостях в течение первых пяти суток эксперимента. Общая продолжительность эксперимента составила суток.

Все эксперименты проведены на искусственной морской воде, приготовленной из соли – ‘‘HW-Marinemix professional’’ (Wiegandt GmbH, Sterkenhofweg 13, D-47807, Krefeld, Germany) с соленостью 32-35‰.

Личинок содержали при температуре 7-8оС. Экспериментальные емкости   были оборудованы аэрацией. В качестве корма использовались живые науплии артемии из расчета 600-800 экз./л.

Для статистической обработки данных использовали программы Excel и STATISTICA 6.0. Достоверность различий рассчитывали с помощью непараметрического критерия Манна-Уитни.

Результаты В первом эксперименте для всех вариантов была зафиксирована высокая выживаемость личинок, а выживаемость личинок в экспериментальных группах достоверно не отличалась от контроля (рис. 2, 3).

Рис. 2. Выживаемость личинок камчатского краба при разных концентрациях препарата "Антибак" в течение одних и двух суток.

Вертикальные линии – стандартное отклонение.

  Рис. 3. Выживаемость личинок камчатского краба при разных концентрациях препарата "Антипар" в течение одних и двух суток.

Вертикальные линии – стандартное отклонение.

Гибель за двое суток не превышала 1-3 особей на емкость. При этом гибель личинок не всегда можно связывать только с действием препарата, так как она могла быть следствием механических травм при пересадке, каннибализма среди личинок или проблем, возникших во время линьки.

Максимальный отход – 5% зафиксирован среди личинок, содержавшихся при концентрации "Антипара" 0,04 мл/л.

Время проведения второго эксперимента совпало с массовой линькой личинок на стадии глаукотоэ. Это один из самых ответственных моментов в жизненном цикле камчатского краба. Выживаемость на сутки (рис. 4) эксперимента в контроле составила в среднем 49% (SD ±11%) (16 зоэа IV / 81 глаукотоэ), в варианте с применением "Антибака" 61% (SD ±±14%) (9 зоэа IV / 112 глаукотоэ) и в варианте с применением "Антипара" 37% (SD ±2%) (25 зоэа IV / 50 глаукотоэ). Выживаемость в вариантах эксперимента с "Антибаком" и "Антипаром" достоверно различались (p=0,009).

  Рис. 4. Выживаемость личинок камчатского краба при использовании препаратов "Антибак" и "Антипар" в течение десяти суток.

Вертикальные линии – стандартное отклонение.

Обсуждение Применение "Антибака" улучшило выживаемость и способствовало удачной линьке на стадию глаукотоэ. Это свидетельствует о том, что "Антибак" и содержащийся в нем ципрофлоксацин, вероятно, не оказывают негативного воздействия на личинок краба и могут применяться при работах по воспроизводству камчатского краба для борьбы с бактериальными инфекциями. Поскольку личинок камчатского краба можно считать достаточно чувствительным тестовым объектом, можно предполагать, что данный препарат безопасен и для других видов десятиногих ракообразных.

Результаты второго эксперимента подтвердили наши опасения относительно негативного воздействия "Антипара" на личинок, скорее всего проявляющегося в нарушении процессов линьки. Можно предполагать, что причиной этого явился формальдегид, содержащийся в "Антипаре". О негативном влиянии формалина на линьку личинок ракообразных указывают и данные других авторов (Castille and Lawrence, 2007). Однако следует также отметить, что даже длительное (в течение суток) применение "Антипара" не вызвало массовой гибели личинок.

  Полученные данные заставляют с осторожностью относиться к возможности применения этого препарата при наличии личинок ракообразных.

Заключение Применение "Антибака" улучшило выживаемость личинок камчатского краба. Это свидетельствует о том, что "Антибак" и содержащийся в нем ципрофлоксацин, вероятно, не оказывают негативного воздействия на личинок и могут применяться при работах по воспроизводству камчатского краба для борьбы с бактериальными инфекциями.

Применение "Антипара" не вызвало массовой гибели личинок.

Однако при его применении наблюдалось снижение выживаемости личинок, что заставляет с осторожность относиться к возможности применения препарата при наличии личинок ракообразных.

Литература Мицкевич О.И., 2006. Раколовство и раководство на водоемах Европейской части России. – С-Пб: ГосНИОРХ. 207 с.

Boghen A.D., 2006. Sensitivity of juvenile lobsters, Homarus americanus L., to different concentrations of malachite green during various states of the intermoult cycle // J. of Fish Diseases. V. 9, Iss. 3. P. 243–248.

McVey J.P., 1993 CRC handbook of mariculture: crustacean aquaculture. CRC press, Boca Raton. 526 pp.

Fang W.H., Shuai Z., Yu H.J., Hu L.L., Kai Z., Liang S.C., 2007.

Pharmacokinetics and tissue distribution of enrofloxacin and its metabolite ciprofloxacin in Scylla serrata following oral gavage at two salinities // Aquaculture. V. 272. № 1–4. P. 180–187.

Wu G., Meng Y., Zhu X., Huang C., 2006. Pharmacokinetics and tissue distribution of enrofloxacin and its metabolite ciprofloxacin in the Chinese mitten-handed crab, Eriocheir sinensis // Anal. Biochem. V. 358. № 1. P.

25–30.

Castille F.L., Lawrence A.L., 2007. The toxicity of erythromycin, minocycline, malachite green, and formalin to nauplii of the shrimp Penaeus stylirostris // J. of the World Aquaculture Society V. 17 Is. 1-4, P. 13-18.

  Speare D.J., Cawthorn R.J., Horney B.S., MacMillan R., MacKenzie A.L.

1996. Effects of formalin, chloramine-T, and low salinity dip on the behavior and hemolymph biochemistry of the American lobster // Сan Vet J. V. 37. № 12. P. 729–734.

  «ПРЕСНОВОДНЫЙ АКВАРИУМНЫЙ КОМПЛЕКС»

ЛИМНОЛОГИЧЕСКОГО ИНСТИТУТА СИБИРСКОГО ОТДЕЛЕНИЯ РОССИЙСКОЙ АКАДЕМИИ НАУК О.Ю. Глызина, Л.И. Черногор, Н.Н. Деникина, О.И. Белых, Ю.В. Сапожникова, С.А. Любочко Лимнологический институт СО РАН В настоящее время при изучении эндемичных организмов является трудностью их содержание и культивирование в лабораторных условиях. В рамках научного направления Лимнологического института СО РАН по выяснению закономерностей функционирования экосистемы озера Байкал на базе института был создан и открыт 2 июля 2009 года Центр коллективного пользования «Пресноводный аквариумный комплекс» (ЦКП ПАК).

Аквариумный комплекс состоит из аквариумов различного объема и приборов, обеспечивающих постоянное авторегурирование условий среды.

Набор оборудования позволяет вести наблюдение за исследуемыми объектами при непрерывных и длительных экспериментах. В ЦКП ПАК проводятся работы по изучению следующих байкальских эндемичных гидробионтов: 3 видов рыб, 4 видов амфипод, 2 видов моллюсков, 2 видов губок и 50 видов водорослей и цианобактерий. На его базе проведены исследования по нескольким темам.

Тема 1. Изучение развития байкальских губок и их клеточной культуры в проточной воде.

Разработан метод культивирования в лабораторных условиях эндосимбиотической водоросли из пресноводной байкальской губки Lubomirskia baicalensis: (рис. 1, 2). Дана характеристика симбиотической водоросли с помощью световой, эпифлуоресцентной, электронной микроскопии и молекулярно-генетических методов. Создана основа для создания коллекций культур примморф пресноводных байкальских губок и их эндосимбионтов. Это дает возможность в дальнейшем исследовать процессы роста, дифференциации и физиологические функции клеток губки, а также идентифицировать белки, вовлеченные в процесс биоминерализации и расшифровать их гены;

исследовать спектр вторичных метаболитов губки в различных условиях.

  Рис. 1. Прикрепление примморф на байкальской воде Рис. 2. Сканирующая электронная фотография культивированных примморф из байкальской губки Тема 2. Изучение взаимодействий эндо- и экзосимбионтов симбиотического сообщества байкальских губок.

Отработана методика длительного содержания сложного симбиотического сообщества эндемичной байкальской губки, выявлены некоторые биологические, экологические и биохимические закономерности взаимоотношений эндо- и экзосимбионтов. Было доказано, что по биохимическим показателям (пигменты, липиды) можно оценить жизненное состояние сообщества (рис. 4) и определить роль различных организмов при изменении условий среды. Полученные результаты показывают перспективность использования аквариумных установок с проточным водоснабжением при исследованиях жизненных циклов гидробионтов, их поведения, трофических связей и др.

  Рис. 3. 40-литровые аквариумные установки с проточной системой водоснабжения и регуляцией светового и температурного режимов Рис. 4. Эндемичный вид байкальской губки Lubomirskia baicalensis в условиях длительного содержания Тема 3. Акустический эксперимент по определению слуховой чувствительности у байкальских рогатковидных рыб и различных популяций байкальского омуля.

Разработана и прошла первые испытания мобильная экспериментальная установка (рис. 5) на основе программно-аппаратного комплекса EthoStudio для изучения поведения и сенсорной экологии байкальского омуля. Выявлено, что байкальский омуль в стае (рис. 6, 7) наиболее адекватно реагирует на звуковой сигнал при 4-5 подкреплениях электростимулом в отличие от одиночных особей в опыте, условный рефлекс у которых, видимо, вырабатывается значительно позднее (10- подкреплений).

Отмечено значительное увеличение активности и уменьшение плотности особей байкальского омуля при звуковом воздействии.

  Рис. 5. Мобильная экспериментальная установка: программно-аппаратный комплекс EthoStudio (1), цифровая видеокамера HDR-HC5 (4), специальный каркас (2) для исключения зрительного контакта экспериментатора с исследуемым объектом (3), аквариумы для изучения акустической (5) и химической (6) коммуникации рыб Рис. 6. Качественный и количественный анализы поведения единичной особи (1) и стаи байкальского омуля (2) при стимуляции разночастотными акустическими сигналами Рис. 7. Карта плотности вероятности (а, в) и активности (б, г) 13 экз.

байкальского омуля без звукового воздействия (а, б) и при звуковом воздействии (в, г) Тема 4. Культивирование одноклеточных водорослей На базе ЦКП ПАК осуществляется культивирование водорослей и цианобактерий из различных пресноводных водоемов. В настоящее время ведется культивирование цианобактерий, выделенных во время «цветения»

в оз. Котокель, цианобактерий из коллекции института гидробиологии НАН Украины и из озера Байкал (рис. 8, 9). В настоящее время культуры растут на минеральной среде Z-8 (Rippka, 1988), в условиях естественного освещения и при температурах от 23-25оС до 36оС.

  Рис. 8. Коллекция пикопланктонных цианобактерий Рис. 9. Цианобактерии, образующие пленки.

Экспериментальный комплекс, включающий проточные и замкнутые аквариумные установки с регулированием факторов среды обитания, установленный в ЦКП ПАК, позволит выявить особенности функционирования экосистемы ультраолиготрофного озера Байкал и получить устойчивые аквакультуры ценных видов гидробионтов с оценкой их изменчивости в искусственных и естественных условиях.

  СУХОПУТНЫЕ РАКИ-ОТШЕЛЬНИКИ.

ЛИЧНЫЙ ОПЫТ СОДЕРЖАНИЯ А.Н. Гуржий Москва Несколько лет назад у российских любителей экзотических животных появились новые питомцы – сухопутные раки-отшельники.

Многие пытаются заводить этих забавных «зверьков», но далеко не у всех они выживают. Я занимаюсь отшельниками уже несколько лет, на основании личного опыта постараюсь рассказать о подводных камнях, ожидающих любителей, и о том, как их избежать.

За время содержания отшельников я успел много подсмотреть в их поведении, заснять интересные моменты. Конечно, были и погибшие раки, к сожалению, с живыми существами это случается. Сейчас у меня живут пять видов этих милых созданий.

Многих мучает вопрос: кем являются раки-отшельники — крабами или раками. С толку сбивает английское название «hermit crab» (дословно:

«краб-отшельник»). На самом деле, раки-отшельники (Anomura) — отдельно стоящая ветвь (инфраотряд) десятиногих раков из подотряда Pleocyemata, пошедшая в развитии своим путем. К подотряду также относятся настоящие раки (Astacidea), крабы (Brachyura) и прочие.

Американские зоологи упорно считают, что раки-отшельники являются крабами и занимают переходную нишу между креветками и настоящими крабами (Руперт и др., 2008).

К Anomura относятся семь семейств: Diogenidae, Lithodidae, Paguridae, Parapaguridae, Pylochelidae, Pylojacquesidae и Coenobitidae. Все, кроме последнего, ведут полностью водный образ жизни;

некоторые виды могут оставаться на суше в период отливов. В семейство Coenobitidae включены два рода — пальмовые воры (Birgus) и собственно сухопутные раки-отшельники (Coenobita).

Сухопутных раков-отшельников известно 11 видов. Обитают они в Восточной Пацифике, Восточной и Западной Атлантике и на Красном море, на островах и побережьях Индийского и Тихого океанов.

Цилиндрический панцирь (карапакс) сухопутных раков-отшельников не имеет выростов, рострум отсутствует или сильно редуцирован. Голова и спинной щит объединены в головогрудь. Глаза хорошо развиты. Антенны плетевидные, две пары. Основания ногочелюстей расположены рядом.

Ходильных ног (переопод), — пять пар. Первая пара преобразована в клешни, левая клешня крупнее правой;

вторая и третья пары ног одинаковой длины или вторая длиннее, без клешней;

четвертая и пятая пары ног сильно редуцированы и служат для удерживания раковины.

Стерниты (сегменты, к которым прикрепляются ноги) пятой пары ног сильно редуцированы. Асимметричное брюшко (абдомен) хорошо   развитое, полное, покрыто тонкой кожей. Панцирь на абдомене отсутствует. Формой брюшко повторяет изгибы раковин. На конце брюшка находятся видоизмененные ножки — уроподы, также удерживающие раковину.

Чтобы определить пол рака-отшельника, его необходимо вынуть из раковины. Безопасно попытаться определить пол можно во время линьки или в те моменты, когда раки покидают свои раковины, чтобы принять ванну. У самок в основании третьей пары ходильных ног, на их обратной стороне, находятся небольшие половые отверстия — гонопоры, на абдомене расположены сильно разветвленные непарные конечности (плеоподы), к которым в период размножения прикрепляются икринки. У самцов на первом сегменте последней пары ног имеются волоски, скрывающие половые отверстия, а плеоподы отсутствуют.

Как и морские виды отшельников, сухопутные не могут существовать без раковины. Так какие функции несет раковина?

Первым делом — это укрытие, защищающее брюшко животного и помогающее регулировать температуру тела. Кроме того, ракушка значительно сокращает потери воды, обеспечивает хранение соленой и пресной воды, обеспечивая возможность длительного нахождения на суше, позволяет регулировать водно-солевой баланс. Это позволяет ценобитам удаляться на большие расстояния от воды.

Раки-отшельники могут использовать как раковины морских брюхоногих моллюсков, так и наземных, особенно популярными бывают раковины ахатин. При необходимости раки могут напасть и убить моллюска, чтобы завладеть его раковиной, а в некоторых случаях отшельники специально собирают и складывают ракушки в определенном месте про запас. Часто такое происходит после гибели рака. Привлеченные трупным запахом, живые сородичи собираются вокруг освободившейся раковины, и начинается подбор новой жилплощади. При этом можно наблюдать, как домик переходит от одного отшельника к другому, пока новые обладатели жилища не будут полностью удовлетворены их размерами и весом.

Одни виды придерживаются исключительно определенных типов раковин, другие согласны использовать любые, даже рапан. При отсутствии раковин раки могут использовать бутылочки, скорлупу кокосовых орехов или обломки стеблей бамбука. Различные виды отдают предпочтение определенным типам раковин с различными входными отверстиями (устьями).

Как правило, здоровые отшельники, взятые в руки, вылезают из раковины с желанием посмотреть, в чем дело. Обычно, достаточно положить рака в теплую воду, чтобы он постарался выглянуть наружу и убежать. В большинстве случаев отшельники быстро привыкают к людям и могут даже сидя на руке, есть или менять раковину.

  Для перевозки ценобит на небольшое расстояние удобно использовать пластиковую коробку с проделанными в стенках отверстиями. Длительный вояж раки с большим комфортом перенесут, если в коробку положить влажный мох или смоченную водой и отжатую поролоновую губку. Не пытайтесь транспортировать отшельников в пакетах с водой и кислородом: чистый кислород им противопоказан, избыток воды тоже;

кроме того, ценобиты могут продырявить полиэтилен ногами или клешнями.

Несмотря на различия в ареалах и образе жизни, все сухопутные раки-отшельники требуют приблизительно одинаковых условий содержания. Приобретать лучше нескольких раков — так им будет веселее жить, все-таки животные они общественные. У некоторых любителей в террариуме содержатся десятки раков. Справедливости ради, надо отметить, что случаи каннибализма у сухопутных раков-отшельников не такая уж и редкость.

В качестве помещения для содержания ценобит можно использовать аквариум, но у него есть серьезный недостаток: высокие температура и влажность вызовут запотевание стенок, особенно, если закрыть аквариум стеклом, в результате вы ничего рассмотреть в нем не сможете.

Незакрытым аквариум также оставлять нельзя, поскольку раки очень хорошо лазают и могут покинуть свое жилище, взобравшись по выступающему в углах сосуда клею.

Лучше все-таки приобрести террариум. Площадь дна у него должна быть не меньше 30 х 50 см, лучше — больше, ведь вам придется поставить туда две большие поилки и кормушку, да и декорации тоже необходимы.

Оптимальная высота террариума — 30-50 см. Расстояние от дна до дверцы или нижнего вентиляционного отверстия — 10-20 см, что позволит насыпать в террариум толстый слой грунта и залить водой. Разумеется, нижняя часть террариума должна быть водонепроницаемой.

На дно насыпают грунт. Мелкий карьерный и тем более кварцевый, имеющий острые грани, песок насыпать не надо: он может попасть внутрь раковины и натереть раку мягкое брюшко. Кроме того, во влажном мелком песке неизбежные органические остатки быстрее загнивают. Лучше использовать коралит с частицами со спичечную головку или дробленую ракушку. Грунт заливают водой приблизительно на 1 см, не больше, иначе раки могут утонуть. По мере загрязнения грунт необходимо промывать или заменять новым.

Подойдут также кокосовые крошка и чипсы.

Обязательно в террариум надо поместить коряги или ветви лиственных деревьев. Они нужны не только как место для лазания, но и как растительная подкормка — раки грызут кору и древесину. Если вам удастся найти ствол «волосатой» пальмы, используйте и его, будет весьма экзотично.

  Отшельники — жители теплых краев. Конечно, и там бывает холодно, но в большинстве своем не так, как в России. Днем температура может быть 26-28 °С, около лампочки накаливания — 30-32 °С (для красноморских раков, содержащихся отдельно от других видов, температуру в точке прогрева можно повысить до 35 °С), ночью 22-24 °С.

Не помещайте внутрь террариума для обогрева греющие кабели: раки их могут повредить. Лучший вариант повышения температуры — греющие кабели, прикрепленные к боковым стенкам террариума (снаружи), керамический нагреватель или зеркальная лампа накаливания. Можно использовать и греющие коврики. Их мощность зависят от температуры в помещении и размеров террариума, но удобнее нагреватели подключать через терморегулятор. Лампы накаливания могут лопнуть при попадании на них капель воды. Чтобы этого избежать применяйте металлический отражатель.

Раки-отшельники могут быть активными как днем, так и ночью. Это зависит от вида, влажности воздуха и температуры в террариуме, личных особенностей организма. Для освещения можно использовать аквариумные люминесцентные лампы, но лучше ультрафиолетовую террариумную лампу «ReptyGlo 2.0» или аналогичную. Чтобы иметь возможность наблюдать за питомцами ночью, установите маломощную синюю лампу.

Вода крайне важна для сухопутных раков-отшельников. Несмотря на панцирь и раковину, животные теряют большое количество воды. Кроме того, по сути, они существа морские, просто живут на берегу.

Соответственно им требуется и морская вода, чтобы восполнить баланс солей. Поэтому в террариум ставят емкости, причем отдельно для пресной и соленой воды. Глубина их должна быть такой, чтобы рак мог погрузиться в воду вместе с раковиной. Удобнее использовать террариумные поилки:

их стенки устроены так, что попавшие в них животные после питья и принятия ванны могут выбраться из воды.

При желании можно устроить пресный водоем непосредственно в террариуме, разделив часть его дна на две неравные части с помощью камней. В меньшей, с тонким слоем грунта, устраивают водоем, в большей — сушу. Здесь толщина грунта должна быть не менее 5 см, как говорилось выше. Недостаток такого водоема — застаивание воды в грунте и начинающиеся в результате этого гнилостные процессы. Именно поэтому я не рекомендую заливать в такой водоем морскую воду: она портится быстрее.

Пресная вода должна быть теплая, отстоянная, без хлора. Можно использовать и аквариумную. С соленой водой все несколько сложнее.

Чистую поваренную соль для ее приготовления применять нельзя, поскольку ракам нужен не только NaCl, но и другие минеральные вещества. В крайнем случае, можно купить пищевую морскую соль.

Морскую соль для ванн применять нельзя: в ней, кроме смеси солей, находится неизвестно что, придающее ей аромат и нежность. Лучше   купить в зоомагазине коробку с солью для морского аквариума. Чтобы получить морскую соленость около 30 ‰, в 1 л воды надо растворить 30 г соли (столовую ложку с верхом). Особая точность здесь не нужна, все равно вода из поилки будет испаряться, а концентрация соли повышаться.

Удобнее приготовить сразу несколько литров раствора и подливать его в поилку по мере испарения воды.

Влажность в террариуме должна быть не ниже 70 %.

Едят отшельники практически все. Я даю им морковь, яблоки, бананы, банановую шкурку, изредка кусочки пресноводной рыбы, зофобаса (предварительно личинок надо обездвижить, раздавив головку пинцетом). Можно включать в рацион кокосовый орех, манго, морские водоросли, землянику. Едят отшельники и хлопьевидный корм для декоративных аквариумных рыбок (стандартный и растительный);

размачивать его, в отличие от гранулированного, не надо.

Если еду класть прямо на мокрый грунт, она будет быстрее портиться, да и грунт загрязняется, поэтому используйте кормушку.

Ракам нужен кальций. Для этого в кормушку насыпают размолотую скорлупу яиц или порошкообразный кальций для рептилий. Можно положить кальциевый камень для грызунов или скелет каракатицы.

Отшельники при необходимости клешней сдирают верхний слой подкормки и отправляют кальций в рот.

Самой серьезной проблемой при содержании отшельников является линька. При неправильном содержании именно она повинна в гибели ваших питомцев.

Периодичность линьки зависит от вида, возраста животного, условий содержания и кормления. Молодые рачки линяют несколько раз в год, взрослые — раз в год-полтора. Голодный рак, не получающий с кормом кальций или получающий его в недостаточном количестве, может и не выйти из линьки.

Незадолго до линьки рак становится светлее. Он начинает много есть и пить, причем как пресную, так и соленую воду. Если вы успеете, то можете воспользоваться рекомендациями американских коллег, советующих использовать при линьке отдельный глубокий садок, сантиметров на 20 засыпанный мелким влажным песком (его влажность определить несложно: если можете слепить куличик, значит, все в порядке). При наличии в террариуме толстого слоя мелкого песка раки зарываются в него, но так бывает не всегда. Обычно они выбирают укромное местечко, где и готовятся к линьке (как вариант — к гибели, если хозяин прозевает). Если грунт грязный, содержащиеся в нем болезнетворные бактерии могут стать причиной гибели рака. Еще одна проблема — соседи. Они нападают на рака без раковины и съедают его.

Защитой от каннибалов может быть пластиковая бутылка емкостью 1,5— л из-под газированных напитков. От бутылки отрезают нижнюю часть, а   верхнюю аккуратно ввинчивают в грунт и закрывают линяющего рака.

Крышку с бутылки снимают, затыкая горлышко ватным тампоном.

Я использую несколько иной способ. Заметив собирающегося линять рака (в это время он почти полностью вылезает из раковины), я вынимаю из террариума животное вместе с ракушкой. Осторожно потянув рака, вынимаю его из убежища. Живой отшельник имеет специфический запах крабовых консервов (американские любители сравнивают его с запахом йода или эпоксидной смолы);

при прикосновении к брюшку — оно слегка шевелится. Тухлый запах — признак погибшего рака.

Удобно использовать контейнер для микроволновки. В его крышке очень тонким шилом проделываю несколько отверстий (их размер должен быть таким, чтобы исключить попадание мушки горбатки). На дно емкости кладу кусок поролона толщиной около 2 см, наливаю сантиметровый слой кипяченой воды и ставлю две небольшие поилки с пресной и соленой водой. Процесс длится несколько дней. Старую шкурку рак съедает, по крайней мере, частично. Приблизительно через 12—20 часов после линьки рак начинает двигаться и выбирает раковину. После этого отшельника можно переводить в общий террариум. Затвердевание панциря длится несколько дней, только после этого рак выглядывает из раковины, начинает активно бегать по террариуму и питаться.

Основная проблема в определении отшельников — изменчивость окраски и отсутствие надежных определителей. В Интернете помещено много противоречивой информации.

Ниже приводится описание видов, доступных отечественным любителям, даны отличительные особенности видов. На русском языке эта информация публикуется впервые.

Земляничный рак-отшельник (Coenobita perlatus) Английское название: Strawberry, Straw, Strawberry Land Hermit Crab.

Длина головогруди: 18 мм.

Распространение: Индо-Пацифика, Австралия, Индонезия, Мадагаскар, Япония, Красное море. Возможна интродукция в тропические регионы. Обитает группами на побережье, пляжах, коралловых рифах.

Видовые особенности. Взрослых раков легко отличить от других видов. Тело и конечности красные или оранжевые, покрыты белыми пятнами и бугорками. Молодые раки белые или розоватые, с возрастом их окраска усиливается (особи с Тайваня имеют такую же окраску, как и взрослые, около 10 % молодых — с белыми поперечными полосками на ходильных ногах).

Глаза в сечении овальные, глазные стебельки того же цвета, что и тело. Антенны оранжевые. Клешни покрыты волосками. Верхняя поверхность большей клешни имеет четыре-семь белых выступов.

Ходильные ноги мощные. Брюшко короткое и толстое. Один из самых красивых раков-отшельников. Может издавать звуки.

Предпочитаемые раковины: Turbo sp., Tonna sp.

  Рис. 1. Земляничный рак-отшельник Индонезийский рак-отшельник (Coenobita brevimanus) Английское название: Indos Land Hermit Crab, Indonesian Land Hermit Crab.

Длина головогруди: 32 мм.

Распространение: острова Тихого и Индийского океанов, от Восточного побережья Африки до Филиппин, о-ва Риукиу, Япония, Китай, Тайвань. На побережье встречается редко (среди камней), предпочитая покрытые травой участки в тропическом дождевом лесу. Всеядный вид, не брезгующий падалью. Предпочитает раковины пресноводных и наземных улиток. Большей частью ночное животное, на день прячущееся под различными предметами или в лесной постилке.

Видовые особенности. Большая клешня по форме напоминает луковицу и намного крупнее маленькой (характерное отличие от других видов). На внутренней стороне большой клешни нет волосков.

Дактилоподит третьей ходильной ноги плоский, и у спрятавшегося в раковину рака плотно прижимается к клешне. Стебельки глаз округлые и часто темные, почти черные. Тело уплощенное. Вторая пара антенн очень длинная. По сравнению с другими видами пуглив.

Предпочитаемые раковины: Turbo sp., Tonna sp., Achatina fulica.

Красноморский рак-отшельник (Coenobita scaevola) Английское название: Arabian Hermit Crab, Red Sea Hermit Crab.

Длина головогруди: нет данных.

Распространение: Северное побережье Аравийского моря, Пакистан, Оман, Синайский полуостров, побережье Красного моря. Приспособлен к жизни в сухих (аридных) областях, граничащих с пустыней. Эти места характеризуются высокой температурой, пониженной влажностью и редкими осадками. Наиболее «жароустойчивый» вид, способный проводить под прямыми солнечными лучами до шести часов (превышение экспозиции приводит к смерти). Дневную жару предпочитает проводить,   зарывшись во влажный песок на глубину 15-20 см или спрятавшись под камнями.

Видовые особенности. Описание данного вида рака найти не удалось.

В продаже данный вид не встречается, но возможен завоз туристами после посещения Египта. В месте обитания красноморского отшельника другие виды не встречаются. Живущий у автора экземпляр довольно пугливый, любит лазать по веткам. На большей клешне ясно видно темно-коричневое большое пятно. Общий фон тела и конечностей песочно-желтый. На ходильных ногах коричнево-ржавые пятна с размытыми краями.

Предпочитаемые раковины: Turbo sp., Polinices mammilla. У автора рак занимает раковину Terebralia palustris.

Мангровый рак-отшельник (Coenobita cavipes) Английское название: Cavipe, Cav, Cavie, Concave Land Hermit Crab.

Длина головогруди: 30 мм.

Распространение: Восточная Африка, Китай, Япония, Малайзия, Тайвань, Микронезия, Полинезия, Индия. Обитает в мангровых лесах.

Ведет ночной образ жизни. В углублениях, залитых морской водой, находили до 30 раков.

Видовые особенности. На голове имеется треугольный рострум.

Клешни сильно различаются по размеру, на них и ногах много светлых бугорков. Верхняя поверхность клешней ровная, нижняя имеет выпуклость. Концы большой клешни светлые, почти белые. На основании большой клешни темное пятно. Обе клешни имеют волоски. Ходильные ноги, особенно третья пара, тонкие. Тело коричневое или темно коричневое. Глаза в сечении овальные. У молодых стебельки черные лишь снизу, с возрастом они становятся полностью черными. Первая пара антенн не красного цвета. Основание второй пары антенн оранжевое.

Брюшко длинное и тонкое. Возможен каннибализм.

Этот вид очень похож на фиолетового рака-отшельника (Coenobita violascens). Основное отличие — первая пара антенн у фиолетового отшельника — красная.

Предпочитаемые раковины: обычно Achatina fulica, реже Turbo sp., Tonna sp., Thinoclavis sinesis, Thais svigny, Volema paradiscia, Terebralia palustris.

Морщинистый рак-отшельник (Coenobita rugosus) Английское название: Ruggie, Rug, Wrinkled Land Hermit Crab, Crying Land Hermit Crab Длина головогруди: 15 мм.

Распространение: Индо-Пацифика, Восточная часть Африки, Филиппины, Малайзия, Япония, Китай, Тайвань, Полинезия, о-ва Риукиу.

Отмечен на Западном побережье Америки. Обитает в прибрежных лесах, не удаляясь от воды дальше, чем на 300 м. Ведет ночной образ жизни, днем прячась в листовом опаде. В природе поедает экскременты черепах и водоросли.

  Видовые особенности. Один из самых распространенных видов. Цвет тела и конечностей у данного вида очень разнообразен: серо-зеленый, оранжевый, белый, розовый и т.д. Это очень затрудняет определения вида.

Есть особи, имитирующие окраску Coenobita purpureus. Тело покрыто множеством светлых бугорков. На головогруди, у основания антенн имеется косая черная полоса, плохо различимая у темных животных.

Посередине головогруди находится темное пятно в виде кольца или подковы. Глаза в сечении овальные, глазные стебельки белые или песочного цвета, На них имеются черно-коричневые полоски, появляющиеся в возрасте один-два года.

Нижняя часть второй пары антенн светло-оранжевая или желтая. На верхней поверхности большей клешни имеются семь характерных наклонных беловатых выступов, на обеих клешнях много волосков.

Нижняя часть большей клешни имеет хорошо различимый выступ.

Крайние членики третьей пары ходильных ног плоские, окраска их более светлая, чем у остальных конечностей. Брюшко толстое и короткое. Может издавать звуки.

Предпочитаемые раковины: Turbo sp., Neritidae, Lunella coronata, Bufonaria sp.

Пурпурный рак-отшельник (Coenobita clypeatus) Английское название: Purple Pincher (PP), Caribbean Land Hermit Crab.

Длина головогруди: 17 мм.

Распространение: Западная Атлантика от Южной Флориды до Венесуэлы, Бермудские и Вест-индские острова. Обитает в удалении от берега. Любит прятаться в дуплах и корнях деревьев.

Видовые особенности. Окрашен преимущественно в красный или пурпурный цвет. Встречаются чисто-красные особи. Тело молодых раков песчано-желтое с большим количеством черных пятен. Большая клешня с возрастом становится все более красной. На конечностях имеется большое количество черных бугорков и пятен. Глаза в сечении круглые, коричневые (а не черные), с более толстым основанием глазных стебельков, чем у Coenobita brevimanus. Глазные стебельки белые с коричневыми пятнами.

Левая клешня крупнее правой, ее верхняя поверхность гладкая. На внутренней поверхности клешней имеются волоски. Ходильные ноги мощные. Брюшко толстое и короткое. Может издавать звуки. В США — наиболее распространенный в неволе вид. В Россию, скорее всего, на настоящий момент не завозился, но под этим названием могут продаваться другие виды.

Предпочитаемые раковины: Cittarium pica, Turbo sp., Cancellariidae, Tonna sp.

Фиолетовый рак-отшельник (Coenobita violascens) Английское название: Viola, Komurasaki Land Hermit Crab.

Длина головогруди: 30 мм.

  Распространение: Никобарские острова, Пхукет, Таиланд, о-в Цебу, Филиппины, некоторые Японские о-ва, Восточная часть Африки, Полинезия. Населяет мангровые леса в устьях рек, взрослые особи нередко встречаются на побережье.

Видовые особенности. Тело темно-пурпурного, темно-синего, черно пурпурного или почти черного цвета. Молодые раки оранжевые. С возрастом окраска становится более синей, но клешни и последние членики ходильных ног остаются оранжевыми. Они синеют лишь с возрастом. Ходильные ноги мощные. Тело покрыто большим количеством белых точек и бугорков. Левая клешня крупнее правой. Наклонные выпуклости на большей клешне отсутствуют. Нижняя половина клешни имеет сильную выпуклость, небольшое количество бугорков и крупное темно-коричневое пятно. На внутренней стороне клешней имеются волоски. Глаза в сечении овальные, глазные стебельки у молодых снизу черные, у взрослых — полностью черные. Первая пара антенн всегда красного цвета. Брюшко достаточно тонкое и длинное. Не умеет издавать звуки.

Предпочитаемые раковины: Achatina fulica, Turbo sp., Neptunea tabulata, Rapana thomasiana.

Литература Гуржий Александр. Сухопутные раки-отшельники. Журнал «В мире животных». № 3 / 2009. Стр. 28-33.

Гуржий А.Н. Сухопутные раки-отшельники. — М.: «Аквариум-Принт», 2009.

Э.Э. Руперт и др. Зоология беспозвоночных. Том 3. – М.: Издательский центр «Академия», 2008, с. 262—263.

  «ПИТЬЕВОЙ ГЕЛЬ» ДЛЯ БЕСПОЗВОНОЧНЫХ А.Н. Гуржий Москва При содержании и разведении сверчков, тараканов, пауков птицеедов, скорпионов и других беспозвоночных одна из проблем, встающих перед их владельцем, — как напоить питомцев. Обычно в инсектарии ставят специальные поилки, кладут влажные ватные тампоны или кусочки поролона, а также опрыскивают инсектарии водой. Но при опрыскивании увеличивается влажность грунта и воздуха. Не всем беспозвоночным это нравится, а личинки сверчков нередко тонут в каплях воды.

Кроме того, при высокой влажности грунта создаются оптимальные условия для развития горбатки, похожей на очень худую дрозофилу.

Горбатка откладывает яйца во влажный грунт, на погибших насекомых и даже на живых членистоногих. Через несколько дней выходят прожорливые мельчайшие личинки, способные съесть не только кладки яиц ваших питомцев и их личинок, но и взрослых животных.

Применение специальных поилок тоже не выход. Так, самки сверчков нередко откладывают яйца не в специальный контейнер с субстратом, а в бумагу, положенную в поилку или мокрую губку.

Оптимальное решение – использование специального «Питьевого геля» для членистоногих. «Питьевой гель» позволяет избежать гибели насекомых и других беспозвоночных от жажды, препятствует излишнему повышению влажности. Уже при первом внесении «Питьевого геля» в инсектарий можно видеть, как насекомые скапливаются вокруг комочков, жадно высасывая влагу или поедая гель. Их брюшко увеличивается в размерах буквально на глазах. Используя «Питьевой гель», вы сможете улучшить самочувствие ваших питомцев, продлив им жизнь. Одни животные (например, пауки) высасывают жидкость из комочков геля, другие (например, сверчки) отгрызают от них кусочки. Под действием пищеварительного сока «Питьевой гель» разлагается на воду и углекислый газ и азот. По мере поедания в инсектарий вносят новые комочки геля.

  Рис. 1. Гель питьевой Рис. 2. Традиционная поилка для сверчков «Питьевой гель» значительно облегчает уход за коллекцией животных, особенно занятым людям, и тем, кому приходится часто уезжать на несколько дней.

В конце 2009 г. были начаты опыты по использованию геля для поения террариумных животных. Были получены положительные результаты при содержании ряда видов гекконов, древесных сцинков и анолисов.

Рис. 3. Личинки сверчков, пьющие Рис. 4. Фрин и гель гель «Питьевой гель» изготовлен на основе полиакриламида, не токсичен, сохраняет свои свойства при высоких и низких температурах длительное время. В случае замерзания, после оттаивания «Питьевой гель» сохраняет свои свойства.

Как известно, полиакриламид можно синтезировать в домашних условиях. Получившийся полимер имеет желтоватый оттенок и содержит большое количество остаточного акриламида – вещества, вредного как для   людей, так и для животных. Использовать такой полимер для поения членистоногих нельзя. Применяемая для изготовления «Питьевого геля»

вода проходит дополнительную специальную обработку, невозможную в большинстве случаев.

Сырье, из которого изготовлен «Питьевой гель» (произведено в Великобритании), безопасно. Оно содержит менее 0,2 % акриламида и имеет гигиенический сертификат. «Питьевой гель» обязательной сертификации не подлежит. Расфасован «Питьевой гель» в ПЭТ банки объемом 330 мл. Чтобы не допустить развития разрушающих гель микроводорослей используются банки коричневого цвета. Для больших хозяйств по заказу выпускается гель, расфасованный в ПЭТ ведра емкостью 2-5 л.

  СТИМУЛЯЦИЯ И КОРРЕКЦИЯ ИММУНИТЕТА РЕПТИЛИЙ ПРИ СОДЕРЖАНИИ ИХ В НЕВОЛЕ Р.В. Желанкин ФГОУ ВПО Московская государственная академия ветеринарной медицины и биотехнологии имени К.И. Скрябина Профилактика болезней рептилий частными владельцами и террариумистами сводится к поддержанию оптимальной температуры и влажности, ультрафиолетового облучения и приёма витаминных препаратов. Рептилии не имеют постоянной температуры тела, поэтому их иммунный ответ зависит от температуры. В случае заболевания рептилий в террариумных коллекциях владельцы часто не знают, как их лечить.

Между тем, лечение любых рептилий всегда должно быть основано на стимуляции их иммунной системы. Подтверждением этому служит положительный опыт применения иммуностимуляторов (эхинацея, иммунофан), пробиотиков (Bird Bene Bac, БИОД-5) и инъекционных витаминных препаратов (элеовит, катозал и т.д.).

Факторы, влияющие на иммунитет рептилий На иммунитет рептилий, помимо температуры, влияют многие экологические и социальные факторы: питание, плотность и динамика популяции, сезон года и т.д. Истощенные или сильно инвазированные паразитами рептилии не способны к адекватному иммунному ответу.

Физиологический стресс после транспортировки снижает иммунореактивность, также как и адаптация к условиям неволи, групповое содержание и всевозможные внутренние болезни.

Синдром дисадаптации Адаптация — способность всего живого приспосабливаться к новым условиям. Нарушения адаптации хорошо известны для высших позвоночных и выражаются в так называемом «синдроме дисадаптации», который заключается в длительном отказе от пищи, истощении и гибели животных.

  Анализ падежа рептилий в крупных зоопарковских коллекциях за последние годы показал, что синдром дисадаптации — непосредственная причина гибели 60% черепах и 80% змей.

Причины и следствия. При раннем выявлении признаков дисадаптации необходимо установить и устранить причину ее возникновения. Это может быть: нарушение температурно-влажностного режима, перенаселенность, неправильное соотношение полов в группе и т.

д.

Синдром дисадаптации возникает у рептилий при стрессовых ситуациях, ведущих к снижению их иммунного статуса.

Следствием синдрома являются: возрастающая чувствительность к инфекционным агентам, возникновение инфекций, вызванных условно патогенными микроорганизмами;

острые гастроэнтериты.

Зимняя спячка Зимняя спячка некоторых рептилий, безусловно, ведёт к сильнейшей иммуносупрессии. Наиболее частыми осложнениями после зимовки являются: истощение, почечная и печеночная недостаточность, гипогликемия, гипопротеинемия, авитаминозы, пневмония, некротический стоматит, парез черепно-мозговых нервов. Иногда первый стул черепахи может практически полностью состоять из живых и погибших гельминтов оксиурид, скопившихся за время зимовки в толстом кишечнике.

Характеристика иммунной системы рептилий Главными органами иммунной системы рептилий являются костный мозг и тимус, а периферическими – селезенка и скопления лимфоидной ткани в пищеварительной и дыхательной системе. Учеными установлено, что рептилии способны как к клеточному, так и к гуморальному иммунному ответу.

К врожденным факторам иммунитета рептилий относятся фагоцитирующие клетки: гетерофилы и другие гранулоциты, моноциты, макрофаги и НК-клетки, а также гуморальные факторы: лизоцим, система комплемента и др.

  К факторам адаптивного иммунитета рептилий относятся Т- и В лимфоциты и различные классы иммуноглобулинов.

Лимфоидный цикл рептилий У многих рептилий существует феномен циклической инволюции лимфоидной ткани, особенно выраженный у голарктических видов ящериц. Белая пульпа селезенки и другие органы иммунной системы зимой подвергаются частичной редукции и начинают регенерировать весной. Это коррелирует со снижением уровня лимфоцитов в периферической крови.

Рептилии, имеющие годовой цикл лимфоидной системы, сохраняют его в неволе, даже если содержатся в сравнительно постоянных условиях в течение года. В Московском зоопарке, например, падеж рептилий увеличивается в зимне-весенний период и распространяется не только на особей, помещенных в зимовку, что связано со снижением их иммунореактивности.

Рис. 1. Взятие крови у черепахи   Рис. 2. Розеткообразование лимфоцитов ящериц-желтопузиков Рис. 3. Гетерофил ящерицы-желтопузика, поглощающий бактерии   Эффективность препаратов для рептилий Проводились исследования на разных группах рептилий: черепахах сухопутных и водных, крокодилах, ящерицах, змеях. При этом учитывались клиническое состояние, гематологические показатели, показатели иммунного статуса, микробный пейзаж кишечника и полости рта. Приём инъекционных препаратов элеовит, борглюконат кальция, раствор Рингера-Локка с добавлением аскорбиновой кислоты и иммунофан быстро стимулирует аппетит у большинства рептилий.

Например, крокодиловый кайман весом около 8 кг, отказывающийся от пищи в течение 10 дней, после приёма препаратов проявил аппетит на следующий день. Обыкновенные гадюки, которые не ели 30 дней, после приёма препаратов также быстро проявляли аппетит. То же можно сказать о многочисленных сухопутных черепахах, независимо от тяжести заболеваний. Также положительные результаты получены при пероральном применении суспензии нанопорошка железа и корма с добавлением этого нанопорошка для сухопутных черепах.

Подробные исследования были посвящены отловленным в районе г.

Сочи и содержащимся в неволе 2 года желтопузикам (Pseudopus apodus) (Желанкин Р.В., Брылина В.Е. и др., 2008). У всех ящериц был определён легочный нематодоз, вызванный нематодами Entomelas sp., и кандидамикоз кишечника. Желтопузикам был применён антигельминтный препарат «Рептилайф-плюс», содержащий ивермектин, празиквантель и дексаметазон, и обладающий выраженным иммуносупрессорным действием, после чего в течение 2 недель через день применялся препарат «Иммунофан». Были проведены иммунологические исследования, которые показали, что иммуномодулятор «Иммунофан» активирует клеточные и гуморальные факторы врожденного иммунитета рептилий (фагоцитарную активность гетерофилов, активность комплемента) и вызывает резкое возрастание показателей адаптивного иммунитета: количества Т- и В лимфоцитов и гамма-глобулинов (рис. 2, 3).

Общее состояние желтопузиков улучшилось, повысился аппетит, при этом в лейкоформуле крови количество лимфоцитов возросло, а гетерофилов – уменьшилось.

  Пробиотики Ещё одним классом препаратов, стимулирующих иммунитет рептилий, являются пробиотики. Одна из главных составляющих действия пробиотиков — антимикробная активность полезных бактерий, входящих в их состав, связанная с выработкой органических кислот, бактериоцинов, ингибиторных белков и других веществ. С помощью пробиотиков возможна:

• терапия и профилактика сальмонеллеза у рептилий в неволе;

• лечение дисбактериозов, которые не редки у рептилий, и особенно у новорожденных ящериц, не имеющих контакта со средой и взрослыми животными.

Разные пробиотики содержат следующие группы полезных бактерий:

лактобактерий, бифидобактерий, лакто- и бифидобактерий, бацилл и других микроорганизмов, а также дрожжевых грибков.

Эффективность применения пробиотиков для рептилий Для рептилий можно рекомендовать пробиотики: Bird Bene Bac (США), Иммунобак, БИОД-5. При применении пробиотика БИОД-5 на основе бацилл Bacillus subtilis ТПИ 13 и B. licheniformis ТПИ 11 для среднеазиатских черепах наблюдалось повышение аппетита и нормализация пищеварения, а также удаление сальмонелл из кишечника (рис.1).

Пробиотик Bird Bene Bac, содержащий Bifidobacterium bifidum, Lactobacillus fermentum, Lactobacillus acidophilus, Lactobacillus casei, Enterococcus faecium, Lactobacillus plantarum, Pediococcus acidilacticii применялся для лечения расстройств работы желудочно-кишечного тракта у игуан, синеязыких сцинков, эублефаров и среднеазиатских черепах.

Клинический эффект после курса пробиотика выражался в купировании диарейного синдрома и исправлении аппетита. Назначение больным ящерицам и черепахам лактобифадола, содержащего Lactobacillus acidophilus и Bifidobacterium adolescens и прекрасно зарекомендовавшего себя в терапии млекопитающих, не оказывало видимого клинического эффекта.

  Выводы Весь комплекс рассмотренных в статье препаратов:

иммуностимуляторов (эхинацея, иммунофан), пробиотиков (Bird Bene Bac (США), БИОД-5, Иммунобак) и инъекционных витаминных препаратов (элеовит, катозал и т.д.) можно рекомендовать для профилактики и лечения:

• синдрома дисадаптации, • нарушения аппетита, • диарейного синдрома, • при инфекционных и инвазионных заболеваниях, в том числе при сальмонеллёзе рептилий, • при травмах, после хирургических операций, • после зимовки, а также для отловленных в природе или импортированных из-за рубежа рептилий.

Литература Васильев Д.Б. Гельминтозы рептилий в неволе и современные паразитоцидные препараты, используемые в террариумной практике.

// Научные исследования в зоологических парках. – М.: Московский зоопарк, 1996. Вып. 5, с. 96 – 117.

Грязнева Т.Н. Применение пробиотика «Биод-5» в рационах кормления просят-отъемышей // Зоотехния, 2005. № 8.- С. 15.

Емельяненко П.А. и др. Методические указания по тестированию естественной резистентности телят. - М.: ВАСХНИЛ, 1980. – 122 с.

Желанкин Р.В., Павлов Г.В. Иммунная и кроветворная система рептилий. – М.: Исследовательский центр качества подготовки специалистов Минобразования РФ, 2008. – 53 с.

Желанкин Р.В., Брылина В.Е., Васильев Д.Б., Павлов Г.В. Иммунный статус и его изменения у ящериц Pseudopus apodus в связи с дегельминтизацией и последующей иммунокоррекцией. // Научные исследования в зоологических парках, выпуск 24, – М.: Московский зоопарк, 2008.

  Земсков А.М. Клиническая иммунология. – М.: ГЭОТАР-Медиа, 2005. – 455 с.

Купер Э. Сравнительная иммунология. Пер. с англ. А.М. Оловникова. – М.:

Мир, 1980. – 380 с.

Масопуст Я., Долежалова В. Основы иммунохимических методов исследования. – Прага, 1979.

Павлов Г.В., Фолманис Г.Э. Биологическая активность ультрадисперсных порошков. – М. 1999. - 77 с.

Фармакологические аспекты применения пробиотиков. // www.zoovet.ru, 2006.

Хайрутдинов И.З., Павлов А.В., Соколина Ф.М. Сравнительная морфология крови двух видов рептилий. // Вопросы герпетологии:

Мат. 3-го съезда Рос. герпетол. общ. им. А.М. Никольского. – СПб:

Изд-во СПБГУ, 2008. – с.415 - 423.

Шарпило В.П. Паразитические черви пресмыкающихся фауны СССР. – Киев: Наукова Думка. 1976. 287 с., ил.

Kollias G.V., Immunologic aspects of infectious diseases, in Hoff G.L., Frye F.L., Jacobson E.R., Diseases of amphibians and reptiles. Plenum Press, London, New York, 1984. p. 660 – 691.

Origgi F.С. Reptile immunology, in Jacobson E.R., Infectious diseases and pathology of reptiles. CRC Press, Tailor & Francis group, 2007, р. 131 166.

  ДЕЙСТВИЕ НАНОДИСПЕРСНЫХ ПОРОШКОВ ЖЕЛЕЗА, МЕДИ, СЕЛЕНА НА РОСТ И РАЗВИТИЕ ПРЕСНОВОДНЫХ РЫБ Р.В. Желанкин, В.М. Пчелин, Е.В. Демидова, Г.В. Павлов ФГОУ ВПО Московская государственная академия ветеринарной медицины и биотехнологии имени К.И.Скрябина В настоящее время нанотехнологии быстро развиваются во многих отраслевых направлениях. К числу высокоэффективных экологически чистых ветеринарных препаратов нового поколения относится и К ульдифферит — ультрадисперсное железо, получаемое методом низкотемпературного водородного восстановления его кислородсодержащих соединений. Выпускают препарат в форме порошка и суспензии коричневого цвета, расфасованных в стеклянные флаконы соответственно, по 100 г и 100 мл, а также в виде таблеток серого цвета в контурной таре.

Препарат применяют с целью повышения общей неспецифической резистентности у с.-х. животных, в том числе у рыб.

На основании многолетних исследований было выяснено, что синтезированный в НИИ Металлургии и материаловедения имени Байкова нанопорошок железа обладает биологической активностью по отношению к растениям, животным и микроорганизмам.

Способ получения ультрадисперсных сред (УДС) включает:

1. Приготовление сырья в виде ультрадисперсного гидроксида металла.

2. Низкотемпературное водородное восстановление гидроксида с получением наночастиц.

3. Диспергирование ультразвуком нанопорошков в водной среде.

Как показали электронно-микроскопические исследования и спектральный анализ, УДС на основе железа содержит: наночастицы железа 10 - 100 нм (в среднем – 60 нм), свободные электроны, катионы, анионы, 2- и 3-валентные формы железа (Fe2+, Fe3+), молекулярный кислород и азот, коллоидные формы гидроксида железа.

Было изучено биологическое действие нанопрепарата железа на темпы роста и гематологические показатели у карпов (табл. 1). Была поставлена задача: выяснить оптимальные дозы введения наножелеза в корм. После 10-дневного кормления темп роста рыбы в опыте оказался выше, чем в контрольных группах. В конце опыта прирост рыбы в опыте был почти на 10% выше, чем в контроле. Наибольшая оснащённость эритроцитов гемоглобином наблюдалась при дозе 0,5 мг/кг. Вывод:

  наибольший эффект на темп роста и активность эритропоэза оказала доза, равная 0,5 мг/кг.

Той же группой ученых исследовалось биологическое действие нанопрепарата железа на рост и выживаемость молоди осетра (табл. 2).

Серия опытов была проведена на молоди осетра массой 6-15 г в лотках.

Рыбу кормили 10 дней кормами с концентрацией УДС железа 0,4 и 1, мг/кг. Результаты эксперимента показали, что средний прирост рыбы по двум опытным бассейнам оказался на 19% выше, чем в контроле.

Таким образом, можно сделать общий вывод о том, что нанопрепарат железа оказывает стимулирующее действие на организм рыб:

1. активизирует процессы эритропоэза;

2. профилактирует полихроматофильную анемию;

3. увеличивает темпы роста (на 15-20%) и прирост массы рыбы (на 20-25%);

4. снижает отход рыбы на 25-30%;

5. происходит увеличение относительного количества гемоглобина, эритроцитов и общего белка в крови.

Таблица 1. Результаты опытов на карпах 1 серия 2 серия Показатели 0,1 0,5 Контр. 0,1 0,5 Контр.

Исх. ср.

19,6 20,3 21,0 23,3 21,5 24, масса, г Конечная ср.

33 34,1 33,3 34,3 32,0 36, масса, г Прирост ср.

массы, % 29,1 30,5 24,3 19,3 25,6 11, через дней Прирост ср.

68,4 68,0 58,6 47,7 48,8 45, массы, % в   конце опыта Гемоглобин, 60,8 72,2 67,2 63,7 63,8 69, г/л в конце опыта Эритроциты, 1,07 1,02 1,1 1,15 1,11 1, млн./мкл, в конце опыта Таблица 2. Влияние СНЖ на рост и выживаемость молоди осетра Опытные бассейны Контрольные 0,4 мг/кг бассейны Показатели 1-2 1-4 Х 1-1 1-3 Х Кол-во рыб, шт. 2000 2000 - 2000 2000 Ср. масса 10,4 13,7 12,1 23,0 10.6 16, начальная, г Ср. масса 52 50 51 85 40 62, конечная, г Прирост, % 400 265 323 270 275 Отход, % 5,5 6,6 6,1 3,9 17,7 10, Основываясь на имеющихся данных, было решено провести эксперимент на аквариумных рыбах. Целью работы являлось определение активности нанодисперсных порошков железа, меди, селена в отношении аквариумных рыб (влияние на рост и развитие). Для этого сухой гранулированный корм для рыб (TetraCichild Granules) опрыскивали растворами порошков в соответствующей концентрации, после чего партия просушивалась и использовалась для кормления. В опыте использовали рыб Aequidens pulcher (бирюзовая акара) одного возраста, живой массой г. Рыбы были разделены на 5 групп (4 экспериментальные и 1 контрольная) по 15 особей, которые содержались в аквариумах объемом 150 л. В аквариумах еженедельно проходила частичная подмена воды (20% от объёма), гидрохимические показатели и температура поддерживались на   постоянном уровне (табл. 3). Взвешивание рыб проводилось еженедельно.

Таблица 3. Условия опыта по действию нанодисперсных порошков железа, меди, селена на рост и развитие аквариумных рыб Добавленный Масса порошок Группа корма/кратность кормления (размер частиц) Железо (25-27нм) Медь (50-57 нм) 15 г / 2 раза в день Селен (~5нм) Железо + селен Контрольная В ходе эксперимента оценивались следующие показатели:

- здоровье и поведение рыб;

- живая масса;

- количество потомства.

Длительность эксперимента составила 3,5 месяца. Полученные результаты обобщены и изложены в табл. 4.

Таблица 4. Действие нанодисперсных порошков железа, меди, селена на рост и развитие аквариумных рыб Живая Отход Живая Живая Живая рыбы масса 1- масса 2- Приплод масса на масса на Группа за опыт завершение начало за й месяц, й опыта, г опыт г месяц, г опыта, г 15 0 19 27 200 15 5 16 21 0 15 6 16 21 0 15 0 19 27 200   15 0 17 24 110 Выводы 1. Введение в корм нанодисперсного железа (препарата К ульдифферит) у молоди карпа и осетра активизирует гемопоэз и увеличивает темп роста рыб.

2. Введение в корм нанодисперсного железа и железо-селенового комплекса оказывает биологическое действие на аквариумных рыб, выражающееся в интенсивном приросте живой массы и повышении репродуктивной способности.

3. Действие нанопорошков меди и селена при пероральном введении характеризуется как угнетающее.

Литература Павлов Г.В., Фолманис Г.Э. Биологическая активность ультрадисперсных порошков. – М. 1999. - 77 с.

Коваленко Л.В., Павлов Г.В, Фолманис Г.Э. и др. Биологическое действие ультрадисперсных порошков железа низкотемпературного водородного восстановления // Перспективные материалы, 1998. № 3. С. 62-67.

Коваленко Л.В., Павлов Г.В., Фолманис Г.Э. и др. Ультрадисперсные порошки в решении проблемы продовольственной независимости России // Физикохимия ультрадисперсных систем, - Обнинск, 1998.

С. 211.

  СИСТЕМА МЕТОДОВ БИОЛОГИИ РАЗВИТИЯ ДЛЯ ИСПОЛЬЗОВАНИЯ В ПРОГРАММАХ ПО СОХРАНЕНИЮ И ВОССТАНОВЛЕНИЮ ПОПУЛЯЦИЙ И ВИДОВ ОСЕТРОВЫХ РЫБ К.В. Ковалев 1, А.С. Грунина 2, А.В. Рекубратский 1, Л.И. Цветкова Всероссийский научно-исследовательский институт пресноводного рыбного хозяйства, Московская обл., пос. Рыбное Институт биологии развития РАН им. Н.К. Кольцова, Москва Еще недавно число живых коллекций осетровых и количество содержащихся в них рыб были явно недостаточными. Теперь же, из-за дефицита диких производителей, все осетровые рыборазводные предприятия, занимающиеся искусственным воспроизводством, приступили к формированию собственных маточных стад. Таким образом, исчезновение с лица Земли многим видам осетровых уже не грозит.

Однако это не касается таких видов как шип или представителей рода лжелопатоносов, а также отдельных популяций разных видов, которые остаются под угрозой полного исчезновения.

Сохранение биоразнообразия осетровых рыб подразумевает не только сохранение видов как таковых, но, по возможности, полное сохранение и поддержание того генетического разнообразия, той сложной популяционной и расовой структуры, которая обеспечила благоденствие осетровым рыбам на протяжении многих миллионов лет.

В искусственных условиях трудно обеспечить необходимую репродуктивную численность, и уже в первом поколении одомашнивания начинает действовать отбор, направленный на приспособление рыб к новым, необычным условиям жизни. В результате генетическая структура одомашненных стад может претерпевать существенные изменения.

Другая проблема, с которой сталкиваются предприятия при эксплуатации производителей, выращенных в искусственных условиях, заключается в ухудшении у них, по сравнению с дикими производителями, репродуктивной функции.

Проблема получения полноценных половых продуктов особенно остро встает также в том случае, когда для воспроизводства имеется ограниченное число самок, пойманных в дикой среде.

Кроме того, уже бывали и могут быть случаи, когда спермии и яйцеклетки восстанавливаемого вида оказываются доступными в разное время.



Pages:   || 2 |
 




 
2013 www.netess.ru - «Бесплатная библиотека авторефератов кандидатских и докторских диссертаций»

Материалы этого сайта размещены для ознакомления, все права принадлежат их авторам.
Если Вы не согласны с тем, что Ваш материал размещён на этом сайте, пожалуйста, напишите нам, мы в течении 1-2 рабочих дней удалим его.