Специфическая активность бифидосодержащих моно- и комплексных биопрепаратов и усовершенствование методов их контроля
На правах рукописи
ЕВЛАШКИНА Вера Францевна Специфическая активность бифидосодержащих моно- и комплексных биопрепаратов и усовершенствование методов их контроля 03.00.07 - микробиология
Автореферат диссертации на соискание ученой степени кандидата биологических наук
Москва - 2009 г.
Работа выполнена в Федеральном государственном учреждении науки «Государственный научно-исследовательский институт стандартизации и контроля медицинских биологических препаратов имени Л.А.Тарасевича» Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека РФ
Научный консультант:
Доктор медицинских наук Чупринина Раиса Павловна
Официальные оппоненты:
доктор медицинских наук, профессор Поспелова Вероника Владимировна доктор биологических наук, профессор Блинкова Лариса Петровна
Ведущая организация: Государственное образовательное учреждение высшего профессионального образования Московская медицинская академия им. И.М. Сеченова Федерального агентства по здравоохранению и социальному развитию.
Защита состоится «»2009 года в часов на заседании диссертационного совета Д 208.046.01 при Федеральном государственном учреждении науки научно-исследовательский институт «Московский эпидемиологии и микробиологиии им. Г.Н. Габричевского» Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека Российской Федерации по адресу: 125212 г. Москва, ул. Адмирала Макарова, д.
10.
С диссертацией можно ознакомиться в библиотеке Федерального государственного учреждения науки «Московский научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии им. Г.Н. Габричевского» Автореферат разослан «_»2009 г.
Учёный секретарь диссертационного совета доктор биологических наук С.Ю. Комбарова
Общая характеристика работы
Актуальность проблемы. Широкое распространение различных болезней, патогенетически связанных с дисбактериозом, и высокая частота выделения лекарственноустойчивых форм патогенных и условно патогенных микроорганизмов, высеваемых при обследованиях на дисбактериоз, делает актуальной проблему обеспечения практического здравоохранения средствами коррекции микробиоценоза разных биотопов организма человека. (Грачева Н.М. с соавт., 1982;
Алешкин В.А. с соавт., 2006;
Феклисова Л.В. с соавт., 2008).
Применение бактерийных препаратов разнонаправленного (пробиотиков) действия неуклонно расширяется и включает не только заболевания желудочно кишечного тракта, но и разные формы патологии полости рта, женских гениталий, кожные болезни, нарушения иммунного статуса и др. (Грачева Н.М. с соавт., 1982;
Анкирская А.С. с соавт., 2000;
Алешкин В.А. с соавт., 2005;
Поспелова В.В.
с соавт., 2007;
Бондаренко В.М., Лиходед В.Г., 2008;
Добрица В.П. с соавт.,2008;
Hoffman F.A, 2008;
Sutton A., 2008). Для целей бактериальной терапии используют биопрепараты из живых микроорганизмов нормального микробиоценоза человека: бифидобактерий, лактобацилл, кишечной палочки, энтерококков и других представителей нормофлоры (Гончарова Г.И., 1970, 1982;
Поспелова В.В. с соавт., 2000, 2008;
Алешкин В.А. с соавт., 2003;
Амерханова А.М., 2003;
Brow A.C., Valiere A, 2004;
Pospelova V.V., 2007;
Camilleri M., 2008).
В России зарегистрированы отечественные и зарубежные моно- и комплексные биопрепараты (бифидумбактерин, бификол, пробифор, бифилиз, колибактерин, ацилакт, аципол, флорин форте, споробактерин, гастрофарм, бифиформ, линекс, экофемин, бактисубтил и др).
Первый отечественный бифидосодержащий биопрепарат бифидумбактерин содержит в своем составе бифидобактерии вида B.bifidum, штаммы № 1, 791 или ЛВА-3 (Гончарова Г.И., 1970, 1982;
Козлова Э.П с соавт., 1987). В настоящее время бифидумбактерин сухой выпускают 10 предприятий РФ. Кроме препарата во флаконах и порошке выпускают бифидумбактерин в форме таблеток, капсул и суппозиториев.
Комплексный биопрепарат бификол создан на основе таксономически отда ленных микроорганизмов двух видов – B.bifidum 1 и E.coli М-17, один из которых строгий анаэроб, а другой растет в условиях аэробиоза. Препарат получают путем совместного культивирования обоих штаммов. В основе композиции препарата лежит природный синергизм бактерий названных видов (Рахимова Н.Г., 1977;
Поспелова В.В., 1979). По данным Государственных клинических испытаний бификола выявлена его высокая терапевтическая эффективность и отмечено оптимальное соотношение производственных штаммов, позволяющее уменьшить на 3 порядка содержание колибактерий, предусмотренное для колибактерина без ущерба для клинической эффективности препарата (Рахимова Н.Г., 1975;
Грачева Н.М., 1982;
Поспелова В.В.с соавт., 1986;
Pospelova V.V., 2006). Выпуск бификола освоен 7 предприятиями РФ и 2 зарубежными.
Созданные в 70-е годы прошлого столетия пробиотики бифидумбактерин и бификол не утратили своего значения и продолжают пользоваться спросом в здравоохранении (Михайлова Н.А. с соавт., 2006;
Осипова И.Г. с соавт., 2006, Бондаренко В.М., 2007). Согласно современным тенденциям развития проблемы бактериальной терапии будущее, несомненно, принадлежит поликомпонентным препаратам-пробиотикам (Алешкин В.А., 2006;
Бондаренко В.М., Лиходед В.Г).
Качество бактерийных препаратов формируется на всех технологических этапах, начиная от штаммов и сырья, используемых питательных сред, условий культивирования бактерий, замораживания, способа их высушивания и кончая готовой продукцией в зависимости от формы выпуска, условий хранения, транспортирования и определяется адекватностью методов контроля.
Биопрепараты должны быть стандартными, стабильными, соответствовать требованиям нормативной документации (НД) в течение всего срока годности, поэтому важное значение имеет контроль готовой продукции (Чупринина Р.П., 2002;
Осипова И.Г., 2006).
Основным показателем качества бифидумбактерина и бификола является специфическая активность, под которой для бактерийных препаратов понимается количество живых бактерий в дозе (ОСТ 91500.05.001.00).
Разработанная технология производства бификола в условиях стационарного культивирования штаммов на предприятии МНИИЭМ им. Г.Н. Габричевского обеспечивала требуемое количественное соотношение живых микроорганизмов обоих видов в дозе препарата - не менее 107 КОЕ бифидобактерий и колибактерий.
Однако освоение производства бификола новыми предприятиями и модификация исходной технологии (использование нового оборудования, глубинного культивирования без соблюдения коррекции кислотности с аэрацией различной степени интенсивности и разных по составу питательных сред) привело к нестандартности препарата по специфической активности. Она колебалась на разных предприятиях от серии к серии. Неконтролируемый рост кишечной палочки и низкое содержание бифидобактерий не позволяли с помощью существующего метода контроля объективно определять количество живых бифидобактерий в дозе бификола как в готовом препарате, так и в полуфабрикате.
Опыт работы контролирующих организаций показывает, что улучшению качества коммерческих препаратов способствует наличие стандартных образцов разных уровней: международных, национальных, отраслевых и стандартных образцов предприятий, использование которых обеспечивает стандартизацию и сравнительное изучение контролируемых параметров препаратов, выпускаемых на разных предприятиях (Дзагуров С.Г., 1970;
Бектимиров Т.А., 2004).
Разработанный ранее Отраслевой стандартный образец (ОСО) колибактерина с успехом применяют в течение многих лет для контроля колисодержащих препаратов. (Лесняк с соавт.,1975;
Шимчук Л.Ф., 1983) До настоящего времени разработок ОСО бифидумбактерина не предпринималось.
В связи с изложенным представлялось необходимым разработать, изучить и внедрить в практику производства ОСО бифидумбактерина для более достоверного определения количества живых бифидобактерий в дозе бифидосодержащих препаратов, а также изучить разные способы ингибирования кишечной палочки в смешанной культуре, не влияющие на рост бифидобактерий и позволяющие учитывать количественное содержание бифидо- и колибактерий при совместном выращивании.
Цель исследования - экспериментально разработать и апробировать в производственных условиях новые методы контроля специфической активности бифидосодержащих моно- и комплексного биопрепаратов (бифидумбактерина и бификола).
Задачи исследования:
1.Оценить информативность метода контроля содержания живых бифидо- и колибактерий в дозе бификола по ВФС 42-65ВС-86.
2. Разработать, изучить и внедрить в практику Отраслевой стандартный образец бифидумбактерина, предназначенный для сравнительной оценки специфической активности бифидумбактерина и бификола.
3. Изучить чувствительность штаммов B.bifidum 1 и E.coli M-17, входящих в бификол, к воздействию высоких температур и к 19 антибиотикам разных химических групп.
4. Изучить кислотообразующую активность бифидо- и колибактерий в смешанной культуре.
5. Изучить чувствительность штаммов и E.coli M-17, B.bifidum составляющих бификол, к ингибирующему действию азида натрия и разработать условия приготовления питательной среды с этим ингибитором, готовой к применению, для контроля содержания живых бифидо- и колибактерий в бификоле.
6. Разработать и апробировать в условиях производства точный метод контроля специфической активности бификола (по содержанию живых бифидо- и колибактерий в дозе).
Диссертация выполнена в соответствии с основными планами научных исследований ГИСК им. Л.А. Тарасевича:
- Характеристика производственных штаммов-продуцентов колибактерина, бифидумбактерина и лактобактерина по антагонистической активности, устойчивости к антибиотикам и жизнеспособности. УДК 578.085.I-612.336.3, № гос. Регистрации 79049914.
- Разработка, усовершенствование и стандартизация методов контроля лекарственных форм биопрепаратов из лакто- и бифидобактерий. УДК 612.336.358.
09.003.12:658.516. № Гос. Регистрации 0186.
- Договоры № 737/089/024 и 034/ 089/009 с Минздравом России – Отраслевая научно-исследовательская программа и «Эпидемиология микробиология» и договор с Федеральной службой по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека № 73-Д в рамках отраслевой научно исследовательской программы «Научные аспекты обеспечения санитарно эпидемиологического благополучия в Российской Федерации на 2006-2010 годы».
Научная новизна 1. Выявлено избирательное действие азида натрия по отношению к кишечной палочке в смешанных культурах с бифидобактериями в жидких питательных средах. Подобраны концентрации и показана возможность использования азида натрия для ингибирования роста кишечной палочки, что позволило разработать, апробировать и внедрить надежный метод оценки количества жизнеспособных бифидобактерий в препарате бификол.
2. Изучена кислотообразующая активность бифидо- и колибактерий при совместном культивировании и выявлена прямая связь между содержанием в исследуемом разведении бифидобактерий (чувствительность до 1 колонии) и показателем титруемой кислотности питательной среды. Показатель кислотности не ниже 100 оТ свидетельствует о присутствии бифидобактерий в данном разведении и позволяет определить количество бифидобактерий в препарате.
3. Показано, что чувствительность к антибиотикам культур B.bifidum 1 и E.coli М-17 в моно- и комплексном препаратах изменяется в зависимости от состава питательных сред и условий культивирования.
4. Разработана модификация питательной среды Блаурокка с использованием азида натрия, обеспечивающая точность количественного учета бифидобактерий в препарате.
Практическая значимость работы 1. Разработан, апробирован на разных предприятиях и внедрен в нормативную документацию метод контроля количественного содержания живых бифидо- и колибактерий в комплексном препарате бификол.
2. Разработан и апробирован на предприятиях Отраслевой стандартный образец бифидумбактерина (ОСО-42-28-161-89), предназначенный для контроля содержания жизнеспособных бифидобактерий в производственных сериях бифидумбактерина, бификола и других бифидосодержащих препаратов. ОСО внесен в Государственный Реестр.
3. Новый метод учета количества живых микроорганизмов в бификоле с использованием модифицированной питательной среды Блаурокка позволил усовершенствовать технологию совместного культивирования штаммов B.bifidum 1 и E.coli М-17 и способствовал повышению качества препарата.
Внедрение результатов работы Результаты научной работы отражены в НД:
1. Изменения № 2 к ВФС 42-65ВС-86 на бификол (ФС 42-3268-96, ФСП 42 0010160601, ФСП 42-0028220201, ФСП 42-0109220501, ФСП 42-0108220601, ФСП 42-0381241702, ФСП 42-01003753002, ФСП 42-0061231902, ФСП 42 0504676205,ФСП 42-6203-06, ФСП 42-1606-06).
2. РП на бификол 3. Свидетельство на ОСО бифидумбактерина 42-28-161-89. Утв. ГИСК им.
Л.А. Тарасевича 5.01.89. ОСО бифидумбактерина внесен в Государственный Реестр.
4. Инструкция по применению ОСО бифидумбактерина.
5. Бифидумбактерин сухой (ФС 42-132 ВС-94, ФС 42- 3947-00;
ФСП 42-0028 212701, ФСП 42-0135112201, ФСП 42-0100-228902, ФСП 42-0110332002, ФСП 42 0338284602, ФСП 42-0269231802, ФСП 42-0109453403, ФСП 42-0108453203, ФСП 42-0381454003, ФСП 42-0022580804, ФСП 42-0010508904, ФСП 42 0504722405).
6. Бифидумбактерин в свечах (ВФС 42-224ВС-89, ФС 42-3240-95;
бифидумбактерин суппозитории ФСП 42-0109027000, ФСП 42-0108027100, ФСП 42-0100-229002, ФСП- 42-0504229004, ФСП 42-0109027005, ФСП 42-0108027105, ФСП 42-0107026605).
7. Бифидумбактерин в таблетках (ФС 42-3449-97, ФСП 42-0135112201, ФСП 42-01070-61705).
8. Биомасса бифидобактерий (ВФС 42-3378-99, ФСП 42-0134137550-01, ФСП 42-0110-305402).
9. Бифидумбактерин в капсулах (ВФС 42-3356-99, ФСП 42-0109137801, ФСП 42-0108138101, ФСП 42-0109137806, ФСП 42-0338353202).
10. Бифидумбактерин форте (ВФС 42-2459-95, ФС 42-3784-99).
11. Бифилиз сухой (ВФС 42-2631-95, ФСП 42-0110027200, ФСП 42- 01081380 01, ФСП 42-0109137901, ФСП 0110-0272-05).
12. РП на бифидумбактерин сухой, таблетки, свечи, капсулы и порошки.
Основные положения, выносимые на защиту Разработанный метод определения количества живых бифидо- и 1.
колибактерий в бификоле позволяет объективно оценить качество выпускаемого на предприятиях страны комплексного препарата.
2. Модифицированная и апробированная на предприятиях отрасли питательная среда Блаурокка с азидом натрия, предназначенная для контроля количества жизнеспособных бифидобактерий в комплексном бифидосодержащем препарате, оптимальна по составу, способу приготовления и чувствительности.
3. Показатели кислотообразующей активности штаммов B.bifidum 1 и E.coli М-17 позволяют определить количество жизнеспособных бифидобактерий и колибактерий в составе комплексного препарата бификол.
Разработанный ОСО-42-28-161-89 бифидумбактерина позволяет 4.
стандартизовать условия проведения контроля бифидумбактерина и бификола на этапах технологического процесса и в готовых препаратах.
Апробация работы. Диссертация апробирована и рекомендована к защите на заседании Ученого совета ФГУН ГИСК им.Л.А.Тарасевича Роспотребнадзора, протокол № 18 от 16.12.2008 г.
Результаты проведенных исследований доложены на: VI Всероссийском съезде микробиологов, эпидемиологов и паразитологов (Н.Новгород, 1991);
в школе ОБК (Москва, 1992, 1993, 1998);
2 Международной конференции, посвященной Пермского НПО 100-летию «Биомед» (Пермь, 1998);
Международном конгрессе «Ликвидация и элиминация инфекционных болезней» (С-Петербург, 2003);
Международной конференции «Пробиотики, пребиотики, симбиотики и функциональные продукты питания». (Москва, 2004);
III конгрессе педиатров - инфекционистов России (Москва, 2004);
Всероссийских научно практических конференциях «Вакцинология». (Москва, 2006;
2008).
Публикации. По теме диссертации опубликовано 17 печатных работ, в том числе 2 в журналах, рекомендованных ВАК РФ.
Структура и объём диссертации. Диссертационная работа изложена на страницах, иллюстрирована 25 таблицами, 5 рисунками, состоит из введения, обзора литературы, главы с описанием материалов и методов, 4 глав с изложением результатов собственных исследований, заключения, выводов, приложения. Список использованной литературы содержит 128 отечественных и 96 иностранных источников.
Все исследования выполнены в лаборатории бактерийных вакцин ФГУН ГИСК им. Л.А.Тарасевича и получены автором самостоятельно.
Содержание работы Материалы и методы исследования Производственные штаммы B.bifidum 1 и E.coli М-17, находящиеся в коллекции ГИСК им. Л.А. Тарасевича. Характеристики данных штаммов изложены в ФС на бифидумбактерин, колибактерин, бификол.
Таблица 1. Бактерийные препараты, использованные в работе Название препаратов Кол-во Предприятие - изготовитель серий Бификол - коммерческие МНИИЭМ им. Г.Н. Габричевского, НПО серии "Биомед" им. И.И. Мечникова, НПО "Иммунопрепарат" г. Уфа, НПО «Биомед» г.
Пермь, Тюменский НИИНИП, Харьковское предприятие по производству бактерийных препаратов, Тбилисский НПО "Бактериофаг", Бифидумбактерин – МНИИЭМ им. Г.Н. Габричевского, НПО коммерческие серии "Биомед" им. И.И. Мечникова, НПО "Иммунопрепарат" г. Уфа, НПО «Биомед» г.
Пермь, «ИмБио» г. Н. Новгогод, Тюменский НИИНИП, Тбилисский НПО "Бактериофаг» Колибактерин - Тюменский НИИКИП, «ИмБио» г. Н.
коммерческие серии Новгогод, НПО "Биомед" им. И.И. Мечникова Экспериментальные Приготовлены в ГИСК им. Л.А. Тарасевича варианты бификола из коммерческих серий колибактерина и бифидумбактерина Экспериментальные МНИИЭМ им. Г.Н. Габричевского совместно серии с ГИСК им. Л.А. Тарасевича бифидумбактерина для приготовления ОСО бифидумбактерина ОСО колибактерина, серия 1.
Антибиотики - 19 наименований, относящиеся к разным химическим группам отечественного и зарубежного производства: эритромицин, олеандомицин, бензилпенициллин, ампициллин, карбенициллин, линкомицин, оксациллин, цепорин, тетрациклин, тетраолеан, гентамицин, метициллин, мономицин, стрептомицин, левомицетин, неомицин, канамицин, леворин, нистатин.
Питательные среды: Блаурокка, КД-5, МПБ, Эндо.
Химические вещества: натрия азид фирмы SERVA, натрия хлорид фирмы «Химмед», натрия гидроксид, фенолфталеин фирмаы «Реахим».
Методы исследования - Количество живых бифидобактерий и колибактерий в одной дозе бификола с подсчетом КОЕ определяли с помощью десятикратных разведений в среде КД- с последующим высевом кишечной палочки на среду Эндо (ВФС 42-65ВС-86 на бификол сухой).
- Количество живых бифидобактерий в одной дозе бифидумбактерина с подсчетом КОЕ определяли с помощью десятикратных разведений в среде Блаурокка (ФС 42-3947-00 на бифидумбактерин сухой).
- Количество живых колибактерий в одной дозе колибактерина с подсчетом КОЕ определяли с помощью десятикратных разведений в 0,9 % растворе натрия хлорида с последующим высевом на среду Эндо (ФСП 42-0504722505) - Определение активности кислотообразования (титруемая кислотность) бифидо- и колибактерий проводили титриметрическим методом при выращивании в среде Блаурокка и выражали в градусах Тернера (оТ) (ФС 42 3947-00 на бифидумбактерин сухой).
- Антибиотикорезистентность штаммов B.bifidum 1 и E.coli М-17 изучали в отношении 19 антибиотиков методом 2 кратных серийных разведений в пробирках со средой Блаурокка и МПБ соответственно в объеме 10 мл.
Изучаемые культуры B.bifidum 1 и E.coli М-17 разводили вышеуказанными средами и в концентрации 105-106 клеток/мл вносили в объеме 1 мл в пробирки с разведенными антибиотиками. Контролем служили пробирки с тем же количеством культуры, не содержащей антибиотиков. За МИК (минимальную ингибирующую концентра цию) в соответствии с требованиями действующих МУК 4.2.1890-04 принимали концентрацию, при которой отсутствовал видимый рост культуры.
- Термостабильность ОСО бифидумбактерина изучали на основании кривой деградации живых микробов при разных температурах и сроках хранения (WHO/ TB/ Technical Guide, 1977).
- Точность розлива, остаточную влажность, наличие вакуума в ампулах определяли по методам, изложенным в МУК 4.1/4.2.588-96.
- Морфологические, тинкториальные и физиолого-биохимические свойства культур изучали общепринятыми методами бактериологии.
- Достоверность различий между результатами исследований вычисляли с помощью методов вариационной статистики (Ашмарин И.П., Воробьев А.А., 1962).
Результаты оценивали на основании данных 5 опытов.
Результаты исследования и их обсуждение Анализ стандартности производственных серий бификола по содержанию жизнеспособных B.bifidum 1 и E.coli М-17 и разработка ОСО бифидумбактерина Согласно исходной НД на бификол, определение количества живых бифидо и колибактерий в бификоле проводили при совместном культивировании штаммов в среде КД-5. Однако трудность определения количественного содержания бифидобактерий заключается в том, что этот микроорганизм является строгим анаэробом и при культивировании на полужидкой среде КД- характерные колонии бифидобактерий видны только на 3 - 4 сутки инкубации.
Колибактерии обладают на этой среде более высокой скоростью роста, с визуальным проявлением мутности на первые сутки роста, не формируют четких изолированных колоний. Поэтому регламентированный метод был неприемлем для количественной оценки содержания бифидобактерий в бификоле.
На первом этапе исследований изучали морфологию роста бифидо- и колибактерий при культивировании в средах КД-5 и Блаурокка. Для этой цели использовали штаммы B.bifidum 1 и E.coli М-17, ОСО колибактерина, коммерческие серии колибактерина, бифидумбактерина, бификола и экспериментальные варианты бификола. Испытуемые препараты разводили согласно ФС, титровали методом десятикратных разведений в пробирках со средой КД-5 и Блаурокка и инкубировали при температуре (38+1) оС в течение 4-х суток. В посевах бифидумбактерина в среде Блаурокка вырастали изолированные колонии в форме «гвоздиков» и плотных «тяжиков» длиной 2-5 мм. При посеве колибактерина отмечали неравномерное помутнение среды с удлиненными рыхлыми «тяжами» длиной 15-20 мм. В опытах с бификолом отмечался рост, аналогичный росту при посеве колибактерина (табл.2).
Таблица 2. Характер роста штаммов B.bifidum 1 и E.coli М-17 на среде Блаурокка Характер роста микроорганизмов в разведениях:
Препараты 10-6 10-7 10-8 10- Просматриваются изолированные БИФИДУМБАКТЕРИН колонии в виде «гвоздиков» или Роста плотных «тяжиков» длиной 2-5 мм нет КОЛИБАКТЕРИН На фоне помутнения среды просматриваются удлиненные рыхлые «тяжи» длиной 15-20 мм.
БИФИКОЛ На фоне помутнения среды просматриваются удлиненные рыхлые «тяжи» длиной 15-20 мм.
Таким образом, было установлено, что вследствие неравномерного помутнения среды, вызванного ростом кишечной палочки, учесть количество бифидобактерий в смешанной культуре невозможно.
В среде КД-5, регламентированной НД, морфология роста кишечной палочки была аналогична росту в среде Блаурокка, тогда как у бифидобактерий в среде КД-5, в отличие от роста на среде Блаурокка, отмечена нечеткая форма колоний:
они были мелкими и более рыхлыми. Поэтому дальнейшее изучение препаратов проводили на среде Блаурокка.
Необходимость стандартизации условий изучения специфической активности бифидосодержащих препаратов требовала разработки ОСО бифидумбактерина по аналогии с действующим ОСО колибактерина, успешно используемым при контроле препаратов, начиная с 1979 г.
Для приготовления серий предполагаемого ОСО бифидумбактерина культуру штамма B.bifidum 1 выращивали в стационарных условиях в бутылях с пита тельной средой Блаурокка при температуре (38+1) оС 48 часов. Полученную биомассу соединяли с защитной средой, разливали по 3 мл в вакуумные ампулы.
температуре минус (39+1) оС Замораживали при в течение 120 часов с последую щим высушиванием в аппарате ТГ-50 в течение 65 часов.
Согласно экспериментально разработанным условиям, на базе МНИИЭМ им.
Г.Н.Габричевского были приготовлены 4 серии предполагаемого ОСО. После изу чения серий с учетом физических свойств, точности розлива по весу сухого вещества в ампулах, количеству жизнеспособных бифидобактерий в 1 мл, активности кислотообразования, остаточной влажности и наличию вакуума была отобрана серия, максимально отвечающая ОСО в соответствии с ГОСТ 8.315-78.
ОСО бифидумбактерина в ампулах имеет вид мелкопористой массы кремового цвета, которая образует гомогенную суспензию при добавлении 0,9 % раствора натрия хлорида. Изучение свойств предполагаемого ОСО показало: точность розлива по сухому веществу – (482,4+1,29) мг с коэффициентом вариации 1,34;
остаточная влажность - 1,07 %, активность кислотообразования - (120+6) 0Т, содержание живых бифидобактерий -(2,0+0,18)х107 КОЕ/мл. В процессе хранения о ОСО при температуре минус С не отмечено отмирания живых бифидобактерий (р0,05). С целью прогнозирования стабильности ОСО в процессе хранения, изучена его термостабильность (методика ВОЗ) в течение при температуре (37+1) 0С. При этом выявлена достаточно высокая дней термоустойчивость препарата. Разработанный ОСО бифидумбактерина апробирован на предприятии МНИИЭМ им. Г.Н. Габричевского (41 серия) и в Тюменском НИИКИП (20 серий). Свидетельство на ОСО-42-28-161- бифидумбактерина и Инструкция по применению утверждены Ученым Советом ГИСК им. Л.А. Тарасевича 05.01.89 г и постоянно используются производствами при контроле коммерческих серий бифидумбактерина с 1989 г, бификола - с г и других бифидосодержащих препаратов.
Изучение устойчивости штаммов B.bifidum 1 и E.coli М-17 в составе бификола к термическим воздействиям и антибиотикам разных химических групп Нами изучено влияние термического воздействия на жизнеспособность штаммов B.bifidum 1 и E.coli М-17. С этой целью образцы бифидумбактерина и колибактерина прогревали на водяной бане при температуре 56 оС и 100 оС.
Показано, что количество жизнеспособных бифидобактерий и колибактерий снижалось с одинаковой закономерностью. Таким образом, исследования показали, что попытка ингибировать кишечную палочку термической обработкой не дала положительных результатов (табл.3).
Таблица 3. Влияние термического воздействия на выживаемость штаммов B.bifidum 1 и E.coli М- Название Исходное Температура Содержание жизнеспособ препарата кол-во и время ных бактерий в дозе воздействия E.coli М- B.bifidum о 7 4 Бифидумбактерин 10 100 С - 1 мин 10 – 10 о 4 56 С - 10 мин 10 – 10 о Колибактерин 100 С - 1 мин 10х10 56 оС - 10 мин 100 оС - 1 мин 107-108 Бификол Учету - 10 мин не подлежит* 56 оС Примечание: *Учету не подлежит вследствие помутнения среды, вызванного ростом колибактерий С целью выбора антибиотика, способного ингибировать рост кишечной палочки и не влиять на рост бифидобактерий, были проведены исследования по определению чувствительности штаммов B.bifidum 1 и E.coli М-17 к антибиотикам разных химических групп.
Из тех антибиотиков, к которым штамм B.bifidum 1 устойчив (леворин, нистатин, канамицин, неомицин, левомицетин, мономицин, стрептомицин), штамм E.coli М-17 был чувствителен только к мономицину, стрептомицину и канамицину Поскольку устойчивость бифидобактерий оказалась (табл.4).
наиболее высокой к канамицину (МИК 226,0 мкг/мл), для дальнейших исследований был выбран этот антибиотик.
При анализе чувствительности к канамицину штаммов, входящих в бификол, выявлено, что после совместного культивирования устойчивость штамма E.coli М-17 повышалась до МИК 128 мкг/мл (табл. 5). При выращивании штамма B.bifi dum 1 в среде с концентрацией канамицина 128 мкг/мл снижалось количество колоний, изменялась их форма и уменьшался размер. Это не позволило использовать канамицин для ингибирования роста кишечной палочки с целью учета количества бифидобактерий в комплексном препарате бификол. По видимому, в процессе совместного культивирования выделяемые бифидобактериями метабо Таблица 4. Сравнительная чувствительность к антибиотикам штаммов B.bifidum 1 и E.coli М- Испытуемые штаммы и степень их чувствительности к антибиотикам (МИК мкг/мл) Антибиотики E. coli М- B.bifidum Леворин 2040;
высокоустойчив 2040;
высокоустойчив Нистатин 2040;
высокоустойчив 2040;
высокоустойчив Канамицин 226,0;
высокоустойчив чувствителен 8.0;
75,0;
высокоустойчив 32,0;
устойчив Неомицин 75,0;
высокоустойчив 32,0;
устойчив Левомицетин Мономицин 25,0;
устойчив 8,0;
чувствителен Стрептомицин 25,0;
устойчив 8,0;
чувствителен Таблица 5. Чувствительность штаммов B.bifidum 1 и E.coli М-17 к различным кон центрациям канамицина в монокультурах и при совместном культивировании Способ Концент- Степень разведения выращенных культур выращи- рация ка- E.coli М-17 B.bifidum вания намицина -6 -7 -8 -9 - 10-7 10-8 10- 10 10 10 10 штаммов мкг/мл Р/Н Р/Н Р/Н Р/Н Р/Н Р/Н Р/Н Р/Н Моно- Р/Н Р/Н Р/Н Р/Н Р/Н Р/Н 128 7 культура Р Р/Н Р/Н Р/Н Р/Н 64 100 21 Р Р Р Р/Н Р/Н 32 100 23 Р Р Р Р Р/Н 8 100 25 Контроль Р Р Р Р Р/Н 100 20 Р/Н Р/Н Р/Н Р/Н Р/Н Р/Н Р/Н Р/Н Совмест ное Р/Н Р/Н Р/Н Р/Н Р/Н Р/Н 128 9 культиви рование Р Р Р Р/Н Р Р Р Р/Н Р Р Р Р Р Р Р Р Р Р Р Р Р Р Р Р Контроль Р Р Р Р Р Р Р Р Примечание: Контроль – рост B.bifidum 1 и E.coli М-17 в отсутствии канамицина;
Р – рост кишечной палочки;
Р/Н - роста не имеется литы повышают устойчивость кишечной палочки к антибиотику. Аналогичное явление в отношении лактобактерий отмечено и другими исследователями (Петров Л.Н., 2008).
Разработка метода оценки содержания живых бифидобактерий в бификоле по активности кислотообразования штаммов B.bifidum 1 и E.coli М- В основу этого метода заложены отличительные свойства двух микроорганизмов отдаленных таксономических групп -B.bifidum и E.coli. Как известно, бифидобактерии сбраживают глюкозу главным образом до уксусной и L+ молочной кислот. Кроме того, в небольших количествах образуются муравьиная и янтарная кислоты. Ферментативной особенностью E.coli является сбраживание глюкозы и других углеводов с образованием пирувата, который затем превращается в молочную, уксусную и муравьиную кислоты. (Bergey).
Различный уровень кислотообразующей активности предположительно мог быть использован для дифференциации штаммов B.bifidum 1 и E.coli М-17 в смешанной культуре.
Активность кислотообразования изучали на монопрепаратах, производственных штаммах и ОСО. В пробирках со средой Блаурокка готовили ряд последовательных десятикратных разведений и инкубировали при температуре (38+1) оС в течение 4 суток. По истечении срока инкубации из каждого разведения, в котором отмечался видимый рост, переносили по 2,5 мл суспензии в пробирки с 25 мл среды Блаурокка. Посевы инкубировали в течение 72 ч. По окончании срока инкубации во всех посевах определяли показатель кислотности по Тернеру (рис. 1). Полученные показатели активности кислотообразования культур B.bifidum 1 и E.coli М-17 сравнивали с количеством колоний, выросших в каждом разведении.
Установлено, что, независимо от степени разведения монопрепаратов и количества колоний, выросших в каждом учитываемом разведении в пределах 10 -10-10, показатели кислотности в образцах после высева из этих разведений колебались в небольших пределах для каждой серии и от серии к серии (табл.6).
При этом показатель кислотообразующей активности бифидобактерий был не менее (100+5) оТ, у кишечной палочки существенно ниже – не более (73+2) оТ.
Следует отметить, что выявление бифидобактерий возможно также в случае, Рис.1. Схема 3-х этапов опыта по выявлению разведения бификола, содержащего бифидобактерии.
Таблица 6. Показатели кислотообразующей активности бифидумбактерина и колибактерина (оТ) в разных разведениях при титровании культур Показатели активности кислотообразования в оТ (M+m) Разве дение Название препарата / производство БИФИДУМБАКТЕРИН КОЛИБАКТЕРИН Штамм Штамм МНИИЭМ «ИмБио» B. bifidum1 Тюменский «ИмБио» E.coli M- им.Г.Н.Габ НИИКИП Н.Новгород Н.Новгород ричевского - 10 160+2 126+4 164+2 72+3 65+2 69+ 10-2 148+9 115+8 160+2 73+2 58+3 70+ 10-3 160+5 120+6 158+4 70+2 62+5 65+ 10-4 165+3 122+8 158+3 68+5 64+4 64+ 10-5 157+8 116+8 150+5 70+2 60+3 67+ 10-6 148+1 120+9 157+2 72+2 65+2 70+ 10-7 133+8 115+5 148+3 73+1 59+3 65+ - 10 125+9 100+5 140+2 73+2 65+5 65+ - 10 22* 22* 126+4 68+2 62+2 65+ - 10 22* 22* 22* 22* 22* 65+ 107 107 108 108 КОЕ/доза Примечание: * кислотность среды когда для определения кислотности берут разведение препарата, содержащее только одну видимую колонию. При этом культура, выросшая через 72 часа, закисляет среду до показателя кислотности, характерного для роста бифидобактерий - 100 оТ и более (табл. 7). Рост кишечной палочки, независимо от засеянной концентрации, закисляет среду не более чем до 75 оТ.
Таблица 7. Показатель кислотности (оТ) среды в зависимости от количества выросших колоний бифидобактерий в дозе Высев из разведения 10- производство № образца Количество Показатель бифидобактерий (КОЕ х 10 ) кислотности «ИмБио» 1 2 Н.Новгрод 2 1 3 1 4 4 5 3 МНИИЭМ 1 5 им. Г.Н.Габри- 2 7 чевского 3 4 4 6 5 5 Штамм 1 8 B.bifidum I 2 9 ОСО 1 1 бифидум- 2 3 бактерина 3 2 4 2 5 2 Разработанный метод определения кислотообразования единичными колониями апробирован на 31 серии бификола разных производств. Полученные показатели варьировали от серии к серии и в ряде случаев не соответствовали предъявляемым требованиям НД (рис 2). Так, только 5 серий МНИИЭМ им. Г.Н.
Габричевского и 2 серии Харьковского предприятия содержали количество бифидобактерий 107, соответствующее НД. Низкое содержание бифидобактерий в бификоле отмечалось на фоне высокого содержания кишечной палочки.
Таким образом, разработанный метод информативен для контроля содержания живых бифидобактерий в дозе бификола, поскольку показатель кислотообразования 100 оТ гарантировано подтверждает их присутствие в данном разведении препарата. Учитывая, что данный метод трудоемок и длителен, возникла необходимость разработать более удобный способ определения живых бифидобактерий в бификоле с использованием ингибитора роста кишечной палочки.
60% % серий с данным показателем 40% 20% 0% МНИИЭМ им. Московский им. Харьковское «Биомед» Пермский ИВС Харьковское «Биомед» Московский Г.Н.Габричевского И.И.Мечникова г. Пермь предприятие ИЭМ ИВС пре-е Показатель количества живых бифидобактерий в lg/мл Показатель числа живых бифидобактерий в lg/мл 7 6 5 4 3 2 Рис.2. Оценка качества бификола различных производств при использовании для контроля метода активности кислотообразования Чувствительность штаммов B.bifidum 1 и E.coli М-17, входящих в бификол, к азиду натрия и использование его ингибирующей активности в отношении кишечной палочки для учета роста бифидобактерий При подборе ингибитора роста кишечной палочки в смешанных культурах мы остановили свой выбор на азиде натрия, который известен подавляющим действием в отношении грамотрицательных бактерий в условиях плотных сред.
Поэтому необходимо было изучить свойства азида натрия в полужидкой среде Блаурокка и подобрать такую концентрацию, которая не влияла бы на рост бифидобактерий.
Анализ полученных данных свидетельствует о том, что азид натрия в концентрации 0,5;
1,0;
1,5 мг на 10 мл среды Блаурокка не оказывал существенного влияния на жизнеспособность бифидобактерий, в концентрации 2 и 2,5 мг угнетал, а в концентрации 3 и 3,5 мг полностью ингибировал его. В опытах с колибактерином установлено, что между количеством жизнеспособных колибактерий и концентрацией азида натрия, необходимой для подавления роста кишечной палочки, существует прямая зависимость. Так, для ингибирования роста кишечной палочки в количестве 103 КОЕ, требуется 0,6 мг азида натрия на 10 мл среды Блаурокка, а при содержании 107 КОЕ нужно 1,6 мг ингибитора.
В результате исследования подобрана концентрация азида натрия 1 мг на мл среды Блаурокка, которая не влияла на жизнеспособность бифидобактерий и была достаточной для полного угнетения роста кишечной палочки в учитываемых разведениях (10-6-10-8). В опыте с экспериментальным вариантом бификола показано, что количество КОЕ бифидо- и колибактерий в дозе соответствовало их количеству в монопрепаратах (табл.8). Так, количество бифидоколоний в среде Блаурокка с азидом натрия и без него в бифидумбактерине и в бификоле в среде с азидом натрия было одинаковым. Количество КОЕ колибактерий в дозе бифико Таблица 8. Оценка жизнеспособности бифидо- и колибактерий в моно- и комплексном препаратах Препара Среда Количество колоний B.bifidum 1 и рост E.coli М- т Блау- в разведениях:
-1 - 10-3 10-4 10-5 10-6 10-7 10-8 10 -9 10- рокка 10 без азида КОЛИ- натрия Р Р Р Р Р Р Р Р Р Р/Н БАКТЕ Р/Н Р/Н Р/Н Р/Н Р/Н Р/Н Р/Н с азидом слабый рост РИН натрия без Учет невозможен 100* 20* 1* Р/Н БИФИ- азида вследствие большого Р/Н ДУМ натрия количества БАКТЕ B.bifidum РИН с Учет невозможен 100* 22* 1* Р/Н азидом вследствие большого Р/Н натрия количества B.bifidum без азида натрия Р Р Р Р Р Р Р Р Р Р/Н БИФИ- с азидом Учет невозможен 100* 20* 2* Р/Н Р/Н натрия вследствие большого КОЛ количества B.bifidum Примечание: Р - рост E.coli M-17;
Р/Н- роста не имеется * количество колоний B.bifidum ла и колибактерина было одинаковым при посеве на среду Эндо и в среду Блаурокка без азида натрия.
Таким образом, разработан простой метод количественного учета жизнеспособных бифидо- и колибактерий в комплексном препарате бификол, доказана его достоверность и информативность.
В связи с тем, что азид натрия добавляли в среду Блаурокка ex-tempore, необходимо было разработать условия изготовления модифицированной среды с азидом натрия, готовой к применению для контроля количества живых бифидо- и колибактерий в производстве (отработать режим стерилизации), а также проверить чувствительность среды Блаурокка с ингибитором. Для этого в 1 литр среды Блаурокка вносили 100 мг азида натрия и перемешивали, получая при этом среду с 0,01 % концентрацией ингибитора. Среду разливали в пробирки по 10 мл и стерилизовали. Нами апробированы разные режимы стерилизации (120 оС- мин;
112 оС - 20 мин;
110 оС - 30 мин) и доказано, что автоклавирование при температуре 110 оС в течение 30 минут не разрушает азида натрия, сохраняет оптимальные ростовые свойства для бифидобактерий и высокую ингибирующую активность в отношении кишечной палочки. Пять партий питательной среды оценивали в опытах по контролю жизнеспособности бифидобактерий на 5-и сериях коммерческого бификола, по 3 образца от каждой серии.
Модифицированная питательная среда Блаурокка с азидом натрия была апробирована на предприятиях отрасли и признана оптимальной по составу и способу приготовления для выявления роста бифидобактерий в двухкомпонентном препарате бификол.
С помощью разработанного метода контроля проведена оценка стандартности коммерческих серий бификола по показателю количества КОЕ бифидобактерий в дозе препарата (рис. 3). Показано, что все отконтролированные (107 КОЕ/дозе) серии бификола отвечали требованиям НД по (n=40) количественному содержанию жизнеспособных колибактерий и только соответствовали по этому показателю для бифидобактерий. В 29 сериях содержание КОЕ в дозе бифидобакте рий было ниже регламентированного показателя.
100% % серий с данным показателем 75% 50% 25% 0% Габричевского Харьковское предприятие "Иммунопрепарат МНИИЭМ им.
"Биомед"им.
Тюменский Мечникова "Биомед" Тбилисский НИИКИП г.Пермь ИВС " г.Уфа Показатель количества живых бифидобактерий lg/мл lg 7 lg 6 lg 5 lg 4 lg 3 lg Рис.3 Оценка качества бификола различных производств при использовании нового метода контроля Внедрение в производство нового метода контроля бификола позволило предприятиям выявить нестандартность технологии изготовления препарата вследствие неточности в определении количества жизнеспособных бифидобактерий на этапах технологического процесса и разработать меры по усовершенствованию производства бификола. Среди отконтролированных в ГИСК им. Л.А. Тарасевича 87 коммерческих серий бификола, приготовленных после внедрения нового метода контроля, 66 соответствовали требованиям НД по содержанию КОЕ бифидобактерий в дозе и только 21 серия (24,1 %) не соответствовала. Эти серии представлены на предварительный контроль в связи с освоением нового производства и были забракованы (рис. 4).
Таким образом, разработанные и внедренные в производство новый метод контроля специфической активности бификола (по жизнеспособности) и ОСО бифидумбактерина способствовали усовершенствованию и стандартизации на каждом предприятии технологии совместного культивирования бифидо- и колибактерий, что отразилось на их соотношении в готовом препарате и привело к повышению качества и стандартности бификола.
после внедрения нового до внедрения нового метода контроля метода контроля 75,86% 27,50% n = 40 n = Количество серий - не соответствует требованиям НД;
- соответствует требованиям НД.
Рис. 4. Эффективность внедрения нового метода контроля бификола при определении количества живых бифидобактерий (р0,05).
Выводы 1. Установлено, что метод контроля по ВФС 42-65ВС-86 двухкомпонентного пробиотика бификол не обеспечивал точного учета содержания живых бифидо и колибактерий в дозе препарата.
2. Выявлены различия по кислотообразующей активности у штаммов B.bi fidum l ( не ниже 100 оТ) и E.coli М-17 (не выше 75 оТ), что служит одним из надежных показателей для определения количества живых бифидо- и колибактерий в дозе препарата бификол.
3. Предложена готовая к применению на производстве модифицированная среда Блаурокка с добавлением азида натрия, ингибирующая рост штамма E.coli М-17 в смешанных культурах и сохраняющая ростовые свойства штамма B.bifidum 1. Это позволяет надежно определять количество бифидо- и колибактерий в двухкомпонентном препарате бификол.
4. Разработан, апробирован и утвержден Отраслевой стандартный образец (ОСО-42-28-161-89) бифидумбактерина, который обеспечивает точный учет содержания живых B.bifidum 1 в моно- и комплексных бифидосодержащих препаратах (бифидумбактерин, бификол, бифилиз, бифидумбактерин форте и т.д.).
5. Показано, что ингибирующее действие высоких температур и различия по чувствительности к антибиотикам разных химических групп не могут быть использованы для надежного разделения бифидо- и колибактерий в препарате бификол.
6. Разработанные методы оценки количества жизнеспособных бифидо- и колибактерий (кислотообразующая активность, определение КОЕ штаммов на модифицированной среде Блаурокка с азидом натрия и использование ОСО бифидумбактерина) обеспечили стандартизацию основных этапов технологии совместного культивирования штаммов B.bifidum l и E.coli М-17. Это положительно отразилось на количественном соотношении бифидо- и колибактерий в готовом препарате и привело к повышению качества и стандартности производственных серий бификола на всех выпускающих его предприятиях.
Список работ, опубликованных по теме диссертации 1.Евтухова Л.Н., Евлашкина В.Ф., Скорикова И.Г. Качество препаратов из нормальной микрофлоры кишечника человека //Сб.научн.тр. Ташкентского НИИВС "Медицина", 1988 - С. 74-79.
2. Евтухова Л.Н., Скорикова И.Г., Евлашкина В.Ф. К вопросу об усовершенствовании метода контроля содержания бифидобактерий в бификоле // Сб.научн.тр. Стандарты, штаммы и методы контроля бактерийных и вирусных препаратов. М.,1989 - С. 98-105.
3. Чупринина Р.П., Евтухова Л.Н. Евлашкина В.Ф. Проблемы стандартизации препаратов из нормальной микрофлоры организма человека //Тезисы докладов YI Всероссийского съезда микробиологов, эпидемиологов и паразитологов. Н.Новгород, 1991.- С. 135-136.
4. Евлашкина В.Ф., Чупринина Р.П., Евтухова Л.Н. Метод оценки жизнеспособных бифидобактерий в препарате "Бификол"//Микробиол. журн., Украина, 1993, Т.55, № 5, с. 84-88.
5. Евлашкина В.Ф., Чупринина Р.П., Евтухова Л.Н. Разработка метода оценки жизнеспособных бифидобактерий в бификоле //Ж. Клиническая лабораторная диагностика.- 1993.- № 4.- С. 73-74.
6. Чупринина Р.П., Осипова И.Г., Евлашкина В.Ф. Препараты для профилактики и лечения дисбактериозов различной этиологии. //В кн.:
«Актуальные проблемы создания и применения иммунобиологических препаратов для диагностики и профилактики инфекционных болезней. – Пермь. 1993, Т.1 - С. 264-279.
7. Евлашкина В.Ф., Чупринина Р.П., Осипова И.Г., Лукьянова О.Ю., Рыба чок А.В. К вопросу о стандартизации технологии изготовления бификола // Роль иммунобиологических препаратов в современной медицине. Материалы международ. симпозиума, посвященного 150-летию со для рождения И.И.
Мечникова и 90-летию Уфимского НИИВС НПО «Иммунопрепарат».Уфа, 1995, ч.1, с.179-182.
8. Чупринина Р.П., Конькова Н.К., Евлашкина В.Ф., Рыбачок А.В.
Перспективы повышения качества препаратов эубиотиков//Современная вакцинология. Тез. док. 2 Междунар. конф., посвящ. 100-летию Пермского НПО «Биомед» Пермь, 16-18.06.1998. с.143.
9. Колганова Т.В., Ватанабэ Х., Далин М.В., Васильева Е.А., Осипова И.Г., Лившиц В.А., Лукьянова О.Ю., Евлашкина В.Ф. К вопросу о механизме защитного действия пробиотиков//Сб.тр.: Биомедицинские технологии. Вып. 16, М., 2001. с.23-29.
10. Чупринина Р.П., Ладыгина А.В., Евлашкина В.Ф. Пробиотики и механизм их лечебного действия//Международ. конгресс «Ликвидация и элиминация инфекционных болезней - прогресс и проблемы» С-Петербург, 3- сентября 2003,- С16-18.
11. Чупринина Р.П., Осипова И.Г., Евлашкина В.Ф., Ладыгина А.В.
Доклинические испытания новых пробиотиков//Матер. Международной конференции.: "Пробиотики, пребиотики, симбиотики и функциональные продукты питания.- Москва, 2004.-С. 10.
12. Осипова И.Г., Евлашкина В.Ф., Васильева Е.А. Классификация пробиотиков, достоинства и недостатки//Материалы 3-го конгресса педиатров инфек-ционистов России: Актуальные вопросы инфекционной патологии у детей.
Инфекция и иммунитет. Москва 8-10.12.2004. - С.247.
13. Чупринина Р.П., Осипова И.Г., Евлашкина В.Ф., Ладыгина А.В.
Доклиническая оценка безопасности (безвредности) производственных штаммов и лекарственной формы пробиотиков//Тез. Всероссийской научно-практической конф. «Вакцинология 2006. Совершенствование иммунобиологических средств профилактики, диагностики и лечения инфекционных болезней» М., 2006, с.105.
14. Терешкина Н.В, Григорьева Л.В., Осипова И.Г., Чупринина Р.П., Евлашкина В.Ф. Исследование «острой» и «хронической» токсичности необходимый элемент доклинического изучения пробиотиков//Клиническое питание.- 2007.- № 1-2.- С. 69.
15. Осипова И.Г., Евлашкина В.Ф., Терешкина Н.В., Васильева Е.А.
Коррекция экспериментального дисбактериоза пробиотиками// Вестник Российского университета дружбы народов. 2008.- № 1.- С. 91-95.
16. Осипова И.Г., Васильева Е.А., Евлашкина В.Ф Дисбиозы кишечника// Методические рекомендации. М.: Изд. РУДН, 2008, 39 с.
17. Чупринина Р.П., Осипова И.Г., Евлашкина В.Ф., Ладыгина А.В., Терешкина Н.В, Абрамцева М.В. Система предварительного доклинического изучения безопасности пробиотиков//Тез. Всероссийской научно-практической конф. «Вакцинология 2008. Совершенствование иммунобиологиических средств профилактики, диагностики и лечения инфекционных болезней» 11-12 ноября М.
2008 с.124.
Список сокращений ВФС - временная фармакопейная статья КД-5 - казеиново- дрожжевая среда КОЕ - колониеобразующая единица МИК - минимальная ингибирующая концентрация МНИИЭМ - Московский научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии МПБ - мясопептонный бульон НД - нормативная документация НИИКИП - научно-исследовательский институт краевой инфекционной патологии ОБК - отдел бактериологического контроля ОСО - отраслевой стандартный образец РП - регламент производства Т - градусы Тернера ФС - фармакопейная статья ФСП - фармакопейная статья предприятия