Штаммы грибов рода trichoderma pers( fr.) как основа для создания препаратов защиты растений и получения кормовых добавок

На правах рукописи

Бондарь Полина Николаевна

Штаммы грибов рода Trichoderma Pers( Fr.) как

основа для создания препаратов защиты растений и

получения кормовых добавок

Специальность 03.01.06. – Биотехнология (в том числе бионанотехнологии)

Автореферат диссертации на соискание ученой степени кандидата

биологических наук

Москва 2011

Работа выполнена в ГОУ ВПО «Сибирский государственный технологический университет» на кафедре химической технологии древесины и биотехнологии

Научный руководитель кандидат биологических наук, доцент Садыкова Вера Сергеевна

Официальные оппоненты:

доктор биологических наук, профессор кафедры биотехнологии РХТУ им. Д.И.

Менделеева Градова Нина Борисовна доктор технических наук, старший научный сотрудник МГУПБ Кузнецова Людмила Станиславовна

Ведущая организация: ФГОУ ВПО «Новосибирский государственный аграрный университет»

Защита состоится «…»_ 2011 г. в _ ч. на заседании диссертационного совета ДМ 212.204.13 в РХТУ им. Д. И. Менделеева ( г. Москва, Миусская пл., д. 9) в ауд._.

С диссертацией можно ознакомиться в Информационно-библиотечном центре РХТУ имени Д.И. Менделеева.

Автореферат диссертации разослан _ 2011г.

Ученый секретарь диссертационного совета ДМ 212.204.13 Шакир И.В.

Заказ № Объем п.л. Тираж 120 экз.

Издательский центр СибГТУ

ОБЩАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА РАБОТЫ

Актуальность проблемы. Грибы рода Trichoderma широко используются как биологические агенты для контроля возбудителей заболеваний растений (Harman, Bjorkman, 1998;

Steward и др., 2006;

Vinale и др., 2006). При рекомендации штамма продуцента для создания биопрепаратов учитывается, как правило, его способность подавлять ряд фитопатогенных грибов и технологичность штамма. В последнее время появились сведения, что разные виды рода Trichoderma способны также вырабатывать фитогормоны (ауксины, этилен, цитокинины) и оказывать, помимо защитных свойств, прямое стимулирующее действие на рост растения (Ousley и др., 1993;

Berg, 2009;

Vinale и др., 2009). Такие воздействия грибов рода Trichoderma на развитие растений очень важны для применения их в сельском и лесном хозяйстве, а также для понимания роли этих грибов в природных и искусственных экосистемах.

Накоплен огромный фактический материал по использованию грибов рода Trichoderma как продуцентов ферментных препаратов, используемых в сельском хозяйстве для приготовления кормов. Однако недостаточная изученность биохимического состава биомассы видов рода Trichoderma не дает возможности гарантированного и безопасного их использования в кормопроизводстве.

Использование грибов рода Trichoderma может быть существенно расширено при решении проблемы переработки сельскохозяйственного сырья и производства кормов животных, содержащих обогащенный селеном мицелий грибов этого рода.

Созданные коллекции, на основе новых активных штаммов из различных экосистем, могут быть потенциалом для отбора штаммов грибов рода Trichoderma и использования их в различных сферах биотехнологии, сельского хозяйства и растениеводства.

Цель работы – отобрать перспективные штаммы рода Trichoderma из коллекции Центра биотехнологии и микологии Сибирского государственного технологического университета для создания биопрепаратов защиты и стимулирования роста растений и для получения кормовых добавок.

Для достижения цели были поставлены следующие задачи:

- исследовать антагонистическую активность штаммов рода Trichoderma в отношении фитопатогенных микроорганизмов родов Alternaria, Bipolaris и Fusarium и провести скрининг с целью выбора штаммов для защиты растений;

- изучить активность метаболитов сибирских штаммов рода Trichoderma как стимуляторов роста хвойных и злаковых растений;

- определить биохимический состав биомассы и компонентов культуральной жидкости штаммов рода Trichoderma;

- исследовать влияние селенсодержащих сред на рост и накопление биомассы штаммов рода Trichoderma;

- изучить степень биодеструкции растительных субстратов отобранными штаммами и их выход КОЕ при твердофазном культивировании для обоснования технологии производства;

- провести испытания полученных опытных образцов препаратов против болезней хвойных и злаковых растений на естественных инфекционных фонах.

Научная новизна. Методом многоступенчатого скрининга отобраны перспективные штаммы грибов рода Trichoderma для защиты злаковых культур от корневых гнилей, вызываемых фитопатогенами из родов Alternaria, Bipolaris и Fusarium.

Впервые установлена ростстимулирующая активность грибов рода Trichoderma в отношении каллусов злаковых и хвойных растений и отобраны перспективные штаммы T. asperellum «Mg-6» и T. harzianum «M99/5» для разработки технологии микроклонального размножения ценных видов хвойных растений.

Определены параметры и субстраты для твердофазного культивирования ростстимулирующих штаммов T. asperellum «Mg-6», T. harzianum «M99/5» и T.

koningii «ТСЛ-06».

Определен биохимический состав биомассы и культуральной жидкости штаммов T. asperellum, T. harzianum, T. koningii и T. viride. Изучено влияние селена на накопление биомассы штаммов рода Trichoderma при поверхностном и глубинном культивировании и показана возможность их использования для получения кормовых добавок.

Практическая значимость работы. Выделены штаммы рода Trichoderma, имеющие потенциальную ценность для производства биопрепаратов защиты растений. Подобран рациональный растительный субстрат для твердофазного культивирования продуцентов. Показана возможность использования штаммов T.

asperellum «Mg-6» и T. harzianum «M99/5» для переработки отходов предприятий деревообрабатывающей и гидролизной промышленности. Разработана в лабораторных условиях технология получения биопрепарата Триходермин-М.

Наработана опытная партия биопрепаратов, с титром 3.5·109 КОЕ/г, антагонистически активных штаммов. Проведены опытно-производственные испытания биопрепаратов на основе штаммов на сеянцах хвойных в лесном питомнике и культурах злаковых растений. Показано положительное влияние биопрепаратов на увеличение урожайности злаков и выход здоровых сеянцев в питомнике.

Апробация работы. Материалы диссертационной работы докладывались и обсуждались на 1 и 2 региональной конференции по биологии (Красноярск, 2007, 2008);

всероссийской научно-практической конференции «Лесной и химический комплексы – проблемы и решения» (Красноярск, 2007);

международной школе конференции «Экология Южной Сибири и сопредельных территорий» (Абакан, 2007);

II съезде микологов России (Москва, 2008);

всероссийской научно практической конференции «Молодые ученые в решении актуальных проблем науки»

(Красноярск, 2008, 2009);

международной научной конференции «Современные средства, методы и технологии защиты растений» (Новосибирск, 2008);

международной Пущинской школе-конференции «Биология – наука XXI века»

(Пущино, 2008);

VII международной научной конференции «Живые системы и биологическая безопасность населения» (Москва, 2008);

5 съезде биотехнологов России (Москва, 2008);

Всероссийской научно-практической конференции «Непрерывное экологическое образование» (Красноярск, 2009).

Работа выполнена при финансовой поддержке следующих грантов: РФФИ-офи – №06-04-08040-офи «Создание высокопродуктивных, устойчивых к патогенам форм хвойных растений в культуре in vitro, на основе современных достижений в области половой репродукции голосеменных»;

РНП.2.2.3.1.2466 Министерства образования и науки РФ «Развитие гербарной коллекции и музея культур грибов Средней Сибири как базы для научно-образовательного процесса»;

РФФИ "Енисей" – № «Биологический контроль биотехнологии сокультивирования хвойных в культуре in vitro с биопрепаратами рода Trichoderma и Streptomyces»;

10-04-90745 (моб_ст) на прохождение научной стажировки в Московском государственном университете прикладной биотехнологии.

Публикации. По материалам диссертации опубликовано 19 печатных работ, в том числе 6 статей в журналах, рекомендованных ВАК. Экспериментальные данные, представленные в диссертации, получены лично соискателем и опубликованы в соавторстве с руководителем и сотрудниками, работавшими совместно с автором в процессе выполнения исследований.

Структура и объем работы. Диссертационная работа стоит из введения, 8 глав, заключения, выводов, списка литературы и приложения. Общий объем диссертации … страниц (основной текст … страниц, приложение … страницы). Диссертация содержит … рисунков и … таблиц. Список литературы включает в себя … источников, из них … на иностранных языках.

СОДЕРЖАНИЕ РАБОТЫ

Во введении обоснована актуальность проблемы, сформулированы цели и задачи исследований, показаны научная новизна и практическая ценность результатов работы.

Глава 1. Обзор литературы содержит анализ и обобщение литературы по использованию грибов рода Trichoderma в биометоде и механизмам биоконтроля фитопатогенов. Проанализированы данные о подходах, используемых в современной систематике этого рода. Показана возможность использования грибов рода Trichoderma для производства кормовых препаратов, обогащенных селеном.

Приводится историческая справка о применении биопрепаратов на их основе для защиты растений. Особое внимание уделено поиску и путям отбора активных штаммов и видов как агентов биологического контроля фитопатогенных грибов и стимуляторов роста растений, приведена характеристика антибиотических и ростстимулирующих веществ рода Trichoderma. Показана целесообразность применения биопрепаратов на растительных остатках для улучшения структуры почв и роста растений.

Глава 2. Объекты и методы исследований.

Объекты исследований. В работе использовали 18 моноспоровых штаммов грибов рода Trichoderma, выделенных из почв различных лесорастительных зон Средней Сибири и республики Тыва и обладающих стабильными культурально морфологическими признаками. Штаммы поддерживаются в коллекции Центра биотехнологии и микологии Сибирского государственного технологического университета.

Оценку антагонистической активности штаммов рода Trichoderma проводили с использованием тест-культур фитопатогенов злаков: Alternaria sp., B. bicolor, B. еllisii, В. nodulosa, B. zeae, F. chlamydosporum, F. heterosporum, F. sambucinum, F. solani и F.

sporotrichioides из коллекции Центра биотехнологии и микологии СибГТУ.

В качестве тест-объектов для определения ростстимулирующей активности были использованы семена и каллусы: лиственницы сибирской (Larix sibirica Ledeb), сосны сибирской (Pinus sibirica Du Tour), сосны обыкновенной (Pinus sylvestris L.), пшеницы линии «КС-1554», пшеницы яровой линии «КС-1607», ячменя сорта «Красноярский 80». Эксплантами для индукции каллуса злаковых служили незрелые зародыши семян ячменя и пшеницы, для хвойных растений использовали незрелые зиготические зародыши элитных деревьев-доноров.

Методы исследования: Идентификацию штаммов рода Trichoderma проводили по культурально-морфологическим (Александрова с соавт., 2001;

Chaverri et al., 2003;

Samuels, 2003) и генетическим признакам (Druzhinina et al., 2005). Морфологическую идентификацию проводили по следующим признакам: строение репродуктивных органов, очертание спор, размеры мицелия (методом сканирующей электронной микроскопии). Для подтверждения видовой принадлежности проводили генетическую идентификацию под руководством д.б.н., проф. Алимовой Ф.К., за что автор выражает ей благодарность. Исследовались участки ядерной рДНК, содержащий ITS1 и 2 и ген tef1. Результаты секвенирования фрагмента гена tef обрабатывали при помощи пакета программ Lasergene 5.03 (DNASTAR, Inc., США).

Для анализа секвенсных хроматограмм использовали программу SeqMan, для выравнивания последовательностей и экспорта их в формате GCG использовали программу MegAlign. Молекулярную идентификацию нуклеотидных последовательностей проводили с использованием программы TrichoMark – TrichoBLAST.

Антагонистические свойства штаммов рода Trichoderma, в отношении фитопатогенных микромицетов, оценивали по показателям гиперпаразитической и антибиотической активности. Изучение антибиотической активности проводили методом лунок и перпендикулярных штрихов (Егоров, 1994;

Алимова, 2006).

Ростстимулирующее действие метаболитов штаммов рода Trichoderma изучали по показателям энергии прорастания и всхожести семян с использованием метода влажных камер (ГОСТ 13056.5-76). Оценку стимуляции роста каллусов злаков и хвойных растений проводили путем их культивирования с добавлением метаболитов грибов при постоянном освещении и температуре 20-24С, длительность каждого пассажа составляла 40 суток. Пролиферацию каллусных культур проводили на питательной среде Мурасиге-Скуга с добавлением 1% и 3% концентрации метаболита в питательную среду. Культуральную жидкость добавляли после автоклавирования питательных сред. Для контрольного варианта использовали среду Мурасиге-Скуга без добавления метаболитов.

Изучение биохимического состава биомассы и метаболитов грибов рода Trichoderma проводили по классическим методам. Общее количество белка определяли по методу Кьельдаля (Емельянова, 1976);

аминокислотный состав - на автоматическом аминокислотном анализаторе A0326V2 (Knauer, Германия), общее содержание триптофана изучали спектрофотометрическим методом, разработанным в Институте биохимии им. А.Н. Баха РАН, содержание липидов с их последующим разделением на нейтральные, глико - и фосфолипиды – по методу Блайя и Дайера (Кейтс, 1975).

Концентрацию селена в мицелии грибов рода Trichoderma измеряли методом атомно-абсорбционной спектрометрии (атомно-абсорбционный спектрометр «Квант ZЭТА»). Процедуру минерализации проб в аналитических автоклавах проводили в соответствии с МУК 4.1.985-00. Токсикологическую оценку мицелия проводили на установке «Искусственный желудок», разработанной в МГУПБ.

Твердофазное культивирование грибов рода Trichoderma проводили на растительных субстратах: коре пихты исходной и после различных химических обработок, коре лиственницы;

гидролизном лигнине, вегетативной части топинамбура исходного и после водной экстракции. Определение химического состава сырья после биодеструкции проводили по общепринятым в химии растительного сырья методикам (Химия древесины, 1994).

Полевые испытания биопрепаратов на основе активных штаммов проводили на посевах Pinus sibirica в Мининском лесном питомнике, расположенном на территории Мининского опытного лесного хозяйства (5610c.ш., 9242в.д).

Эффективность действия препарата в агроценозе проводили на пшенице линии «КС 1554» и ячмене сорта «Красноярский-80» оценивали после сбора урожая по следующим параметрам: масса 1000 зерен, высота растений, продуктивная кустистость, количество зерен в колосе, количество растений к уборке, урожайность.

Для оценки влияния внесения биопрепаратов на микробиоту почв использовали методы, разработанные Д.Г. Звягинцевым (1991) и Й. Сэги (1983).

Эксперимент проводили в трех-пяти повторностях. Статистическую обработку результатов экспериментов и оценку достоверности различий проводили по критерию Стьюдента для уровня вероятности не менее 95% с использованием пакета программ Microsoft Excel 2007 и Statistica 8.0.

РЕЗУЛЬТАТЫ ИССЛЕДОВАНИЙ 1. Антагонистическая активность сибирских штаммов грибов рода Trichoderma.

Одним из главных ограничений для широкого использования препаратов на основе грибов-антагонистов рода Trichoderma для защиты растений является зависимость их эффективности от типа почвы, гидротермичеких факторов, состава микробиоты, сортовых особенностей культур, а также экологической ниши, где будет функционировать продуцент. В этом случае целесообразно использование местных штаммов грибов рода Trichoderma, как наиболее приспособленных к конкретным почвенно-климатическим условиям. В связи с этим представляют интерес исследования антибиотической и гиперпаразитической активностей штаммов грибов рода Trichoderma в отношении доминирующих в Сибири видов возбудителей болезней растений из родов Fusarium, Bipolaris и Alternaria.

Оценка гиперпаразитической активности показала как гетерогенность штаммов в пределах одного вида, так и межвидовые различия по степени активности изолятов Trichoderma в отношении фитопатогенных микромицетов. Все виды Bipolaris и Alternaria чувствительны к микромицетам рода Trichoderma, тогда как виды рода Fusarium оказались более устойчивыми к антагонистам.

Гиперпаразитическая активность в отношении штаммов фитопатогенов достоверно различалась у всех штаммов T. asperellum. Максимальную активность в отношении изолятов Bipolaris и Alternaria проявили штаммы «Mg-6» и «30»;

другие штаммы этого вида «TH-5», «TH-7», «TH-11» и «119» проявляли минимальную активность в отношении тех же фитопатогенов. Самыми активными штаммами в отношении всех изолятов Fusarium оказались штаммы T. asperellum «119», «Mg-6» и «Mg-97» и T. citrinoviride «TH-4».

Максимальную антибиотическую активность в отношении Alternaria и Bipolaris проявили штаммы T. koningii «ТСЛ-06» и «ТСГ», T. asperellum «31» и «119», в отношении Fusarium – T. asperellum «Mg-6» и T. koningii «ТСЛ-06». Штаммы T.

asperellum «Mg-97», «TH-5», «TH-7», «TH-11», T. citrinoviride «МК» и «TH-4», T.

harzianum «M99/5» антибиотического действия в отношении всех фитопатогенов Alternaria, Bipolaris и Fusarium не показали.

Анализ активности штаммов рода Trichoderma в отношении комплекса видов Bipolaris и Alternaria методами кластерного анализа показал, что по набору вышеуказанных признаков все штаммы, вне зависимости от видового происхождения, разделяются на два кластера (рисунок 1А). К первому кластеру был отнесен штамм T.

koningii «ТСЛ-06», который проявил высокую гиперпаразитическую и максимальную антибиотическую активность в отношении всех видов Bipolaris и Alternaria. Второй кластер разделился на два подкластера: в первый подкластер объединились три штамма: T. asperellum «31» и «119» и T. viride «О-97», характеризующиеся средней гиперпаразитической, но высокой антибиотической активностью в отношении большинства штаммов видов Bipolaris и Alternaria. Во второй подкластер объединены все остальные штаммы рода Trichoderma.

Анализ активности штаммов рода Trichoderma в отношении комплекса видов Fusarium позволил условно разделить штаммы-антагонисты на три кластера (рисунок 1Б). В первый кластер вошли два штамма T. asperellum «Mg-6» и T. koningii «ТСЛ 06», характеризующиеся высокой гиперпаразитической и антибиотической активностью по сравнению с другими штаммами. Второй кластер объединил четыре штамма T. harzianum «M99/5», T. asperellum «К-12», T. viride «Lg-2» и «Lg-1», в третий кластер вошли все остальные штаммы, которые проявляли выборочную активность в отношении некоторых видов Fusarium.

T. harzianum «Унив»

T. viride «Lg-2»

T. harzianum «М99/5»

T. asperellum «Mg-97»

T. citrinoviride «MK»

T. asperellum «K-12»

T. viride «Lg-1»

T. asperellum «Mg-6»

T. asperellum «30»

2. T. koningii «ТСГ»

T. viride «O-97» 2.1 T. asperellum «119»

T. asperellum «31»

T. koningii «ТСЛ-06»

А Уровни сходства (Эвклидово расстояние) T. harzianum «Унив»

T. citrinoviride «ТН-4»

T. asperellum «31»

T. koningii «ТСГ»

T. citrinoviride «MK»

T. asperellum «Mg-97»

T. asperellum «119»

T. viride «O-97»

T. asperellum «30»

T. viride «Lg-1»

T. viride «Lg-2»

T. asperellum «K-12» T. harzianum «М99/5»

T. koningii «ТСЛ-06»

T. asperellum «Mg-6»

Б Уровни сходства (Эвклидово расстояние) Рисунок 1 – Кластерный анализ антагонистической активности в отношении фитопатогенов родов Bipolaris и Alternaria (А);

рода Fusarium (Б) Полученные данные свидетельствуют о том, что штаммы состоят из клонов с разной антибиотической активностью, что обуславливает необходимость селекции активных штаммов по отношению к набору штаммов-возбудителей болезней растений.

2. Ростстимулирующая активность штаммов рода Trichoderma Положительное влияние биологически активных компонентов, продуцируемых видами Trichoderma, на ростовые показатели растений, отмечено на многих промышленно значимых зерновых культурах и древесных видах, однако это зависит от применяемого штамма (Harman и др., 2004;

Romano, 2008). Оценка действия на рост растения может способствовать отбору продуцентов препаратов с комплексным воздействием – как стимуляторов роста и как антагонистов фитопатогенных грибов.

Штаммы Trichoderma исследованы на способность оказывать ростстимулирующее действие на широком диапазоне растений. В связи с этим, использование биопрепаратов на основе этих грибов может быть расширено, если в качестве одного из главных факторов отбора для штамма определить их способность оказывать стимулирующее действие на рост растения.

На основе кластерного анализа по антагонистической активности были отобраны 8 штаммов рода Trichoderma и проведены исследования их ростстимулирующих свойств в отношении семян злаковых и хвойных растений.

Исследования показали, что штаммы рода Trichoderma, в зависимости от видовой принадлежности, оказывают как стимулирующий, так и ингибирующий эффект на энергию прорастания и всхожесть и биометрические показатели проростков семян злаков. Так, штаммы T. koningii «ТСЛ-06», T. koningii «ТСГ» и T.

harzianum «M99/5» проявляют достоверную стимулирующую активность по сравнению с контролем. Все штаммы вида T. asperellum в различной степени оказывают ингибирующее действие. Остальные исследуемые штаммы не оказывали достоверного действия на энергию прорастания и всхожесть семян. Таким образом, полученные нами данные свидетельствуют о различном действии штаммов рода Trichoderma на показатели всхожести и энергии прорастания семян злаков, что необходимо учитывать при их отборе для использования в биоконтроле.

Для установления истинного ростстимулирующего эффекта используемого антагониста необходимо исключить присутствие фитопатогенов при выращивании растений. С этой целью удобно использование культуры каллусов. В результате исследования ростстимулирующего действия метаболитов штаммов на каллусы было установлено, что обработка каллусов ячменя сорта «Красноярский-80» метаболитами штаммов T. harzianum «M99/5» и T. koningii «ТСЛ-06» с концентрациями 1% и 3% способствовала значительному увеличению их роста. Максимальный стимулирующий эффект на каллусы злаков оказали метаболиты штамма T. harzianum «М99/5»: прирост каллуса при внесении 1% концентрации был в 3.6 раза, а при внесении 3% концентрации – в 3 раза выше контроля. Метаболиты штамма T. koningii «ТСГ» стимулировали рост каллусов только при добавлении 3%-й концентрации.

Обработка каллусов пшеницы сорта «КС-1607» метаболитами штаммов T.

koningii «ТСЛ-06» и «ТСГ» оказала ингибирующий эффект: прирост каллусов при внесении метаболитов был ниже контрольного варианта. При внесении метаболитов штамма T. harzianum «М99/5» в обеих концентрациях различия роста в опытном и контрольном варианте были недостоверны (рисунок 2).

4, 4, 3, 3, Диаметр каллуса, мм Диаметр каллуса, мм 3, 1% 3, концентрация 2,50 1% 2, метаболита 2,00 концентрация 3% 2,00 метаболита концентрация 1, 3% 1, метаболита 1,00 концентрация 1, метаболита 0, 0, 0, 0, Trichoderma Trichoderma Trichoderma контроль «ТСЛ-06»

harzianum «M99/5»

koningii koningii Trichoderma Trichoderma Trichoderma контроль «ТСГ»

«ТСЛ-06»

harzianum «M99/5»

koningii koningii «ТСГ»

Б А Рисунок 2 – Влияние метаболитов штаммов рода Trichoderma на рост каллуса ячменя «Красноярский-80» (А) и каллуса пшеницы сорт «КС-1607» (Б) По результатам проведенных исследований на семенах и каллусах злаковых растений установлено, что биологически активные компоненты отобранных разных штаммов-антагонистов могут избирательно влиять на развитие растений, оказывая как стимулирующее, так и ингибирующее действие.

Исследования стимулирующего эффекта штаммов рода Trichoderma на хвойных видах показали, что обработка семян лиственницы сибирской и сосны обыкновенной метаболитами штамма T. asperellum «Mg-6» стимулировала как всхожесть, так и энергию прорастания в сравнении с контролем. Обработка метаболитами культуральной жидкости штамма T. harzianum «M99/5» увеличивала энергию прорастания и всхожесть семян всех исследуемых видов хвойных растений.

Достоверное стимулирующее влияние метаболитов штамма T. harzianum «M99/5» установлено при обработке каллусов всех трех испытуемых хвойных видов (рисунок 3). Наибольший стимулирующий эффект был достигнут при обработке каллусов лиственницы сибирской. Средняя масса каллуса через 40 суток культивирования, оказалась в 1.5 раза больше по сравнению с контролем. При обработке каллусов сосны сибирской объем превышал контрольный в 1.3 раза.

Исследования показали, что в течение всего периода культивирования каллусов метаболиты штамма T. harzianum «M99/5» оказывали ростстимулирующее действие и на каллусы сосны обыкновенной, однако к концу культивирования прирост опытного каллуса достоверно не отличался от контрольного.

А Б В Рисунок 3 – Динамика роста эмбриогенного каллуса лиственницы сибирской (А), сосны сибирской (Б) и сосны обыкновенной (В) при обработке метаболитами T.

asperellum «Mg-6» и T. harzianum «M99/5».

При введении в питательную среду метаболитов штамма T. asperellum «Mg-6» на определенном этапе роста была отмечена стимуляция роста каллуса лиственницы сибирской и сосны сибирской, тогда как к концу культивирования объем опытных и контрольных вариантов каллусов достоверно не различался. При обработке каллусов сосны обыкновенной штамм T. asperellum «Mg-6» достоверно снижал их прирост в 1.5 раза в сравнении с контролем. Из этого следует, что при использовании этого штамма в биоконтроле можно ожидать только эффект подавления фитопатогенных микромицетов, но не ростостимулирующее действие на сеянцы.

В результате проведенных испытаний на семенах и каллусных культурах хвойных растений было установлено, что действие метаболитов штаммов T.

harzianum «M99/5» и T. asperellum «Mg-6» на растительный организм не видоспецифично. Объекты каждого вида избирательно реагировали на виды грибов рода Trichoderma. Результаты очевидно показывают ростстимулирующий эффект штамма T. harzianum «M99/5» на каллусы хвойных, тогда как оба штамма стимулируют прорастание семян. Можно предположить, что такое стимулирующее действие метаболитов T. asperellum «Mg-6» на семена достигается активацией иммунитета растения и подавления внутрисеменной инфекции. Тогда как метаболиты штамма T. harzianum «M99/5» оказывают еще и непосредственный ростстимулирующий эффект за счет биосинтеза специфических соединений.

3. Возможности использования грибов рода Trichoderma для получения кормовых добавок Способность видов рода Trichoderma утилизировать широкий набор субстратов, технологичность, сравнительно высокая скорость роста и низкая токсичность в отношении растений и животных предполагают возможность их использования, наряду с традиционными для этого рода отраслями биотехнологии, для разработки кормовых добавок и БАД. Для рекомендации микромицетов как продуцентов кормовых препаратов и БАДов обязательным условием является определение белков и липидов в биомассе, как наиболее ценных компонентов, принимающих участие в важнейших функциях организма.

Для определения общего содержания белка грибов рода Trichoderma использовали биомассу и культуральную жидкость штаммов T. asperellum «Mg-6», «TH-5», «TH-7» и «TH-11», T. harzianum «M99/5», T. koningii «ТСЛ-06» и «ТСГ», T.

viride «Lg-1» и «Lg-2».

Исследования показали, что наибольшее количество белка содержится в биомассе штаммов T. asperellum «TH-11» и «ТН-5», «М99/5» T. harzianum и «ТСЛ-06»

T. koningii, которое составило 22.43 и 21.88%, 20.14% и 18.50%, соответственно. Эти же штаммы грибов рода Trichoderma накапливали белок и в культуральной жидкости от 1.26 до 1.54% (таблица 1). Сравнительная оценка аминокислотного состава мицелия штаммов показала, что в исследуемых образцах общее содержание аминокислот составляет от 14.91 до 21.77% от сухого веса. Общее количество незаменимых для сельскохозяйственных животных и птицы аминокислот от общей суммы аминокислот в чистой культуре мицелия штаммов «Mg-6», «TH-5», «TH-7» и «TH-11» вида T. asperellum и T. harzianum «M99/5» составляет 54.12;

56.87;

60.13 и 57.58% соответственно. Причем среди незаменимых аминокислот в мицелии исследуемых штаммов преобладают такие как лизин, аргинин и лейцин, лимитированные в растительных кормах для животных.

Липиды, наряду с белками, занимают важное место среди биологически активных веществ, причем их ценность тем выше, чем больше в их составе важных в биологическом отношении фосфолипидов (Феофилова, 2008, 2009).

Исследования липидной фракции штаммов показали, что общее содержание липидов в биомассе микромицетов рода Trichoderma составляет от 4.21 до 13.57%.

Сравнительный анализ определения доли общих липидов в биомассе изучаемых микромицетов показал, что наибольшее их количество содержат штаммы вида T.

asperellum – «TH-11», «Mg-6», «TH-7» и «TH-5» от 10.99 до 13.57% (таблица 1).

Таблица Содержание белков и липидов в биомассе и метаболитах грибов рода Trichoderma, % Белки Липиды Штаммы Культуральная Культуральная Биомасса Биомасса жидкость жидкость Trichoderma asperellum «Mg-6» 16.43±0.65 0.57±0.05 13.13±0,48 1.36±0, Trichoderma asperellum «TH-5» 21.88±0.71 1.38±0.03 10.99±0,17 0.88±0, Trichoderma asperellum «TH-7» 17.71±0.58 0.71±0.03 12.70±0,63 0.50±0, Trichoderma asperellum «TH-11» 22.43±0.79 1,26±0.03 13.57±0,42 0.57±0, Trichoderma harzianum «M99/5» 20.14±0.78 1.41±0.12 4.92±0,12 0.40±0, Trichoderma koningii «ТСЛ-06» 18.50±0.84 1.54±0.25 8.79±0,14 0.21±0, Trichoderma koningii «ТСГ» 15.17±0.55 0.22±0.03 4.21±0,48 1.82±0, Trichoderma viride «Lg-1» 16.33±0.67 0.44±0.11 6.91±0,23 1.83±0, Trichoderma viride «Lg-2» 15.67±0.50 0.37±0.03 4.38±0,56 1.63±0, В составе липидов биомассы и культуральной жидкости микромицетов рода Trichoderma преобладают гликолипиды, на втором месте нейтральные, затем фосфолипиды. Наибольшее содержание гликолипидов отмечено у штаммов вида T.

asperellum – «Mg-6», «ТH-5» и «TH-11» (71.07, 72.79 и 68.06% от общей фракции соответственно). Нейтральные липиды в значительном количестве были обнаружены в биомассе штаммов T. koningii «ТСЛ-06» (35.53%), T. harzianum «M99/5» (33.83%).

Наибольшее содержание фосфолипидов выявлено у штаммов T. asperellum «TH-7» и T. viride «Lg-1» (18.55 и 18.38%).

По результатам исследования количества белков и липидов в биомассе грибов Trichoderma были отобраны 4 штамма, перспективных для получения кормовых препаратов: T. asperellum «TH-5» «TH-7» и «ТН-11», T. harzianum «M99/5» которые были оценены на взаимодействие с селеном в дальнейших исследованиях.

Обогащение микроэлементами сред при культивировании грибов может стать перспективным источником получения кормовых добавок, содержащих органические формы селена в мицелии. Проведенные исследования по влиянию селена на прорастание спор штаммов Trichoderma показали, что они обладают различной чувствительностью к изменению концентрации селена в среде. При концентрациях элемента в среде 15 мг/л прорастаемость спор достоверно не отличалась от контроля, при концентрации 20 мг/л имело место стимулирование роста грибов, а доза 25 мг/л достоверно ингибировала прорастание спор. Добавление селена в количестве 20 мг/л приводило к подавлению или задержке роста штаммов в условиях стационарного культивирования без перемешивания. При глубинном культивировании токсическое действие селена в концентрации проявлялось слабее и снижение урожая биомассы не было отмечено для всех исследуемых штаммов. Для штамма T. asperellum «TH-5»

установлено увеличение выхода биомассы по сравнению с контролем на 1.2% (таблица 3).

Таблица Trichoderma при глубинном культивировании Накопление биомассы штаммами на 10 сутки, г а.с.в.

Штаммы Контроль Концентрация селена, 20 мг/л Trichoderma asperellum «TH-5» 4.38±0,10 5.28±0, Trichoderma asperellum «TH-7» 3.49±0,09 3.88±0, Trichoderma asperellum «TH-11» 3.80±0,09 3.89±0, Trichoderma harzianum «M99/5» 4.97±0,11 4.81±0, Проведенные исследования показали, что при содержании селена 20 мг/л в среде в условиях стационарного культивирования без перемешивания штаммы накапливали от 10.76 до 27.43 мкг/г сухой биомассы. В условиях глубинного культивирования наибольшее количество селена накапливалось в мицелии штамма «TH-5» Trichoderma asperellum и составляло 937.5 мкг/г (таблица 4).

Таблица Содержание селена в биомассе штаммов рода Trichoderma при глубинном культивировании, мкг/г Штаммы Контроль Концентрация селена, 20 мг/л Trichoderma asperellum «TH-5» 0,48 937, Trichoderma asperellum «TH-11» 0,65 805, Trichoderma harzianum «M99/5» 0,06 334, С помощью установки искусственный желудок было установлено, что биомасса мицелия отобранного штамма «TH-5» T. asperellum с селеном и без селена не является токсичной и может быть использована в качестве кормовой селенсодержащей добавки.

4. Твердофазное культивирование грибов рода Trichoderma на растительных субстратах Успех использования биологического метода защиты растений зависит не только от подбора высокоэффективного штамма рода Trichoderma, но и в равной мере от качества полученного биопрепарата на его основе. Твердофазным способом биопрепараты получают на отходах агропромышленного комплекса. Перспективным является расширение сырьевой базы для производства биопрепаратов наиболее распространенных отходов деревообрабатывающей промышленности, которые при внесении одновременно улучшают структуру почв. Для подбора дешевых и экологически чистых субстратов была проведена оценка способности биодеструкции отходов сельского хозяйства и деревообрабатывающей промышленности штаммами грибов рода Trichoderma (T. asperellum «Mg-6», T. koningii «ТСЛ-06» и T. harzianum «M99/5») отобранными по антагонистической и ростстимулирующей активности для производства биопрепаратов.

При росте на исследуемых растительных субстратах образуются конидиеносцы с конидиями, форма и размеры которых не отличаются от органов бесполого спороношения, формирующихся при росте на стандартных питательных средах.

Однако титр данных штаммов различается. Так, наибольший выход КОЕ штамма T.

asperellum «Mg-6» отмечен на коре пихты исходной, выход спор составил 3.5·109, топинамбуре исходном – 3,4·109 и коре пихты после экстракции изопропанолом – 3.22·109 (таблица 5). Предварительная химическая обработка различными органическими растворителями либо не повышает степень доступности сырья для деструкции штаммов, либо оказывает ингибирующий эффект на рост грибов. Таким образом, для наработки препарата можно использовать отходы без предварительной химической обработки.

Таблица Титр (КОЕ/г) штаммов рода Trichoderma на растительных субстратах на 15 сутки культивирования T. asperellum T. harzianum T. koningii Субстрат «Mg-6» «M99/5» «ТСЛ-06»

8 2. Гидролизный лигнин 1.6010 2. 3.30·107 1.10107 2. Кора лиственницы после СО2-экстракции Кора пихты:

3.50·109 1.33·109 1.24· - исходная 4.00·108 0.90108 0. - после экстракции гексаном 3.00·108 7.80107 6. - после экстракции горячей водой 3.22·109 5.30108 5. - после экстракции изопропанолом 2.86·109 3.00108 3. - после экстракции холодной водой Топинамбур:

3.40·109 2.20·109 2.70· - исходный 1.90·108 2.10·108 3.70· - после водной экстракции Скрининг штаммов для получения биологических препаратов на растительных субстратах должен определяться не только их антагонистической активностью, но и способностью усваивать при твердофазном культивировании используемый субстрат.

В дальнейшем была исследована степень биодеструкции грибами рода Trichoderma трех субстратов: гидролизный лигнине, коре пихты и вегетативной части топинамбура. О результатах эффективности воздействия ферментативного комплекса штаммов рода Trichoderma на лигноуглеводные субстраты судили по изменению целлюлозных и лигниновых компонентов, а также накоплению гуминовых веществ (таблицы 6 и 7).

Наибольшей степени деструкции подвергались компоненты коры пихты. Из всех исследуемых субстратов максимальное снижение легкогидролизуемых и трудногидролизуемых полисахаридов отмечено при росте штамма T. asperellum «Mg 6» на коре пихты, при этом количество легкогидролизуемых полисахаридов по сравнению с исходным сырьем уменьшилось в 1.3 раза, трудногидролизуемых полисахаридов – в 1.7 раза.

При росте штамма T. harzianum «M99/5» содержание легкогидролизуемых и трудногидролизуемых полисахаридов снижалось на 16% на гидролизном лигнине, на 24% на топинамбуре и на 27% на коре пихты. При росте штамма T. koningii «ТСЛ-06»

содержание легкогидролизуемых и трудногидролизуемых полисахаридов на тех же субстратах снижалось на 19%, 20% и 32%, соответственно.

Процесс деструкции лигноуглеводного комплекса сопровождается образованием гуминовых веществ. Наши исследования показали, что образование гуминовых кислот отмечено у всех штаммов на трех типах субстратов, однако их количество зависит от типа субстрата и самого продуцента. Наибольшее количество гуминовых веществ отмечено в результате культивирования штамма «Mg-6» T. asperellum на коре пихты и составило 11.8%.

Таблица Химический состав коры пихты исходной до и после биодеструкции %, а.с.с.

После биодеструкции штаммами До Показатели T. asperellum T. harzianum T. koningii биодеструкции «Mg-6» «M99/5» «ТСЛ-06»

Легкогидролизуемые 16.70 13.22 12.70 14. полисахариды Трудногидролизуемые 20.80 12.20 14.54 11. полисахариды Сумма полисахаридов 37.50 25.42 27.24 25. Лигниновые вещества 43.50 47.30 46.40 48. Гуминовые вещества - 11.80 8.90 5. Белок 3.29 3.93 3.85 3. Зола 8.50 4.40 5.10 4. При культивировании штамма T. asperellum «Mg-6» на гидролизном лигнине снижение содержания лигниновых веществ было более значительно по сравнению с другими штаммами, что можно объяснить его более высокой фенолоксидазной активностью (Махова, 2003).

Таблица Химический состав гидролизного лигнина до и после биодеструкции %, а.с.с. с учетом убыли массы После биодеструкции штаммами До Показатели T. asperellum T. harzianum T. koningii биодеструкции «Mg-6» «M99/5» «ТСЛ-06»

Легкогидролизуемые 2.98 1.58 1.21 1. полисахариды Трудногидролизуемые 9.52 9.08 9.22 8. полисахариды Сумма полисахаридов 12.50 10.66 10.43 10. Лигниновые вещества 71.05 63.09 68.54 69. Гуминовые вещества - 11.32 10.90 1. Белок 2.79 3.31 3.53 3. Зола 7.40 4.40 5.10 5. Таким образом, по совокупности показателей для получения биопрепарата были рекомендованы кора пихты в качестве субстрата и штаммы T. asperellum «Mg-6» и T.

harzianum «M99/5» как продуценты. Предпосылками для использования коры пихты в качестве сырья для производства биопрепарата являются ее высокий гумусообразующий потенциал и максимальная доступность для ферментативной системы продуцентов.

Исследования, проведенные в лабораторных условиях, позволили разработать технологию получения биопрепарата Триходермин-М на основе штаммов T.

asperellum «Mg-6» и T. harzianum «M99/5».

5. Оценка эффективности использования биопрепаратов на основе штаммов грибов рода Trichoderma в полевых условиях.

Опытные партии биопрепаратов Триходермин-М в виде порошка были наработаны и испытаны на посевах пшеницы сорта «КС-1554» и ячменя сорта «Красноярский-80» на Мининском опытно-производственном поле КНИИСХ и на территории Мининского лесного питомника на посевах Pinus sibirica L.

Исследование влияния биопрепарата на урожай злаковых культур показало, что для ячменя достоверное увеличение в сравнении с контролем наблюдается по трем показателям из шести (количество зерен в колосе, растений к уборке, урожайность), а для пшеницы по двум (количество зерен в колосе и масса 1000 зерен).

Обработка посевов сосны сибирской биопрепаратом повысила число всходов на 25.6% и выход сеянцев 1-го года на 35.7% от контроля.

Оценка внутренней инфекции семян полученного урожая злаковых, выращенных при использовании препарата Триходермин-М, показала уменьшение внутренней инфекции фитопатогенами в 1.3 раза в опыте с пшеницей и в 2 раза в опыте с ячменем по сравнению с контрольными семенами.

Исследование состава микрофлоры почвы при посеве злаковых показало, что при использовании биопрепарата Триходермин-М происходят изменения количественного отношения состава микроорганизмов. При посевах пшеницы и ячменя по сравнению с исходной почвой, как в контроле, так и в случае применения биопрепарата, наблюдается значительное увеличение количества аммонификаторов в почве, при этом их количество в присутствии препарата Триходермин-М на 25% выше, чем в контроле. Численность азотфиксаторов к концу сезона уменьшается, при внесении биопрепарата наблюдается уменьшение на 10% по сравнению с контролем.

Исследование состава микрофлоры почвы при посеве сосны сибирской показало, что, как в контрольном варианте, так и в присутствии триходермина, по сравнению с исходной почвой происходит уменьшение аммонификаторов на 18 и 39%, соответственно. При использовании препарата численность азотфиксаторов тоже уменьшается, а актиномицетов увеличивается на 42%.

Сравнение комплексов микромицетов, заселяющих почвы, до и после обработки триходермином, позволило установить, что они различаются как по богатству видов, так и по частоте встречаемости. Наибольшее видовое разнообразие характерно для комплекса микромицетов прикорневой зоны пшеницы и ячменя, выращенной в контроле. Доминирующее положение среди сапротрофов занимали грибы, относящиеся к родам Penicillium и Aspergillus. Наиболее существенные изменения в структуре комплекса микромицетов прикорневой зоны пшеницы и ячменя были обнаружены при обработке триходермином. Отмечено уменьшение видового разнообразия грибов, что свидетельствует о глубине сдвигов в микоценозе. Резко снизилась популяционная плотность возбудителей корневых гнилей родов Alternaria и Bipolaris. После обработки триходермином посевов сосны сибирской отмечено уменьшение популяционной плотности возбудителей заболеваний растений рода Fusarium, снизилась не только частота встречаемости в структуре сообщества, но и их жизнеспособность. Таким образом, интродуцированные штаммы изменяют структуру микобиоты, подавляя фитопатогены и увеличивая долю сапротрофных групп организмов.

ТЕХНОЛОГИЧЕСКАЯ ЧАСТЬ 6. Технологическая схема получения биопрепарата Триходермин-М Блок-схема получения биопрепарата Триходермин-М на основе штаммов T.

asperellum «Mg-6» и T. harzianum «M99/5» приведена на рисунке 6. Кора пихты, измельченная до 3-5 мм, стерилизуется и направляется в растильную установку.

Посевной материал получают выращиванием на качалке на среде Чапека. Суспензия вносится в субстрат из расчета 1х106 КОЕ/г а.с.с. Вытяжной вентилятор обеспечивает подачу и удаление воздуха. На подающей и вытяжной линиях воздуха устанавливают фильтры для бактериальной очистки воздуха.

Кора пихты стерилизация конидиальная суспензия Субстрат воздух культивирование Ферментационная биомасса воздух воздух на очистку сушка, фасовка Биопрепарат Рисунок 6 – Блок-схема получения биопрепарата Процесс культивирования грибов рода Trichoderma в растильной камере протекает в следующих условиях: влажность субстрата – 70-75%, температура – 25 27С. Через 15 суток культивирования гриба ферментационная масса высушивается при температуре до влажности 5-8% и стерильно расфасовывается.

ВЫВОДЫ 1. В результате проведенных исследований 18 штаммов рода Trichoderma показано, что в пределах одного вида штаммы имеют неодинаковую гиперпаразитическую и антибиотическую активность, поэтому принадлежность к виду не может служить определяющим фактором для отбора продуцентов препаратов защиты растений. Высокой антагонистической активностью в отношении фитопатогенов злаков родов Bipolaris, Alternaria, Fusarium обладают штаммы T.

asperellum «Mg-6», T. harzianum «M99/5» и T. koningii «ТСЛ-06».

2. В экспериментах in vitro и in vivo на каллусах и семенах показано, что положительное действие на рост злаковых и древесных растений обусловлено не только подавлением фитопатогенов, но и биосинтезом ростстимулирующих метаболитов штаммами T. asperellum «Mg-6» и T. harzianum «M99/5». Это дает возможность использования этого свойства как фактора отбора штаммов для создания новых высокоэффективных биопрепаратов для защиты от болезней и повышения продуктивности растений.

Для получения высокопродуктивных и устойчивых к патогенам растений при микроклональном размножении из каллусов перспективно использование биологически активных метаболитов штаммов T. asperellum «Mg-6» и T. harzianum «M99/5».

3. На основе изучения биохимического состава мицелия показана возможность использования штаммов грибов рода Trichoderma в качестве продуцентов кормового препарата и отобраны культуры, перспективные для получения БАД.

- Количество белка, содержащееся в биомассе штаммов T. asperellum «TH-11» и «ТН-5», T. harzianum «М99/5» и T. koningii «ТСЛ-06», составляет от 18.50% до 22.43%. Качественный состав аминокислот белка мицелия штаммов характеризуется наличием незаменимых аминокислот: лизина, триптофана, аргинина и лейцина, лимитированного в растительных кормах, использующихся для животных.

- Общее содержание липидов в биомассе микромицетов рода Trichoderma составляет от 4.21 до 13.57%. В составе липидов биомассы и культуральной жидкости микромицетов рода Trichoderma преобладают гликолипиды, на втором месте нейтральные, затем фосфолипиды 4. Исследовано влияние селена на рост и продуктивность штаммов грибов рода Trichoderma.

- Определены условия культивирования штаммов и оптимальная доза 20 мг/л селена в питательной среде. Показано, что наибольшее количество селена накапливается в мицелии грибов в условиях глубинного культивирования и составляет от 334.3 до 937.5 мкг/г в зависимости от штамма.

- На основании сравнительной оценки влияния селена на продуктивность биомассы грибов был отобран штамм «TH-5» T. asperellum, биомасса которого не является токсичной и может быть использована в качестве кормовой селенсодержащей добавки.

- получена селенсодержащая кормовая добавка с содержанием белка не менее 22%, селена 93.75 мг/г и определена ее перевариваемость, обеспечивающая активность пепсина 0.213 ТЕ.

5. Исследован процесс биодеструкции растительных отходов: коры пихты, гидролизного лигнина и твердого остатка топинамбура сибирскими штаммами рода Trichoderma;

- Показано, что все исследуемые штаммы рода Trichoderma способны использовать в качестве субстратов древесные отходы техногенной сферы и твердый остаток топинамбура.

- На основании сравнительной оценки ростовых показателей исследуемых штаммов определены условия культивирования на коре пихты, обеспечивающие титр КОЕ у штаммов T. asperellum «Mg-6» 3.50·109 и T. harzianum «M99/5» 1.33·109.

- Изучена биодеструкция растительных отходов при твердофазном культивировании антагонистически активных штаммов T. asperellum «Mg-6», T.

harzianum «M99/5» и T. koningii «ТСЛ-06», обеспечивающая снижение в биомассе легко- и трудногидролизуемых полисахаридов и относительное накопление гуминовых соединений. При культивировании штамма T. asperellum «Mg-6» на коре пихты и лигнине количество гуминовых веществ составляло 11.80% и 11.32% на а.с.с., при культивировании штамма T. harzianum «M99/5» 8.90% и 10.90% на а.с.с., соответственно.

6. В лабораторных условиях разработана технологическая схема получения биопрепарата Триходермин-М твердофазным культивированием штаммов T.

asperellum «Mg-6» и T. harzianum «M99/5» на коре пихты.

- Биопрепарат получен в виде воздушно-сухого порошка коричневого цвета с титром КОЕ 3.5х109 спор/г. Испытания опытных партий биопрепарата показали его эффективность в защите от фитопатогенов злаков и хвойных, повышении продуктивности ячменя и пшеницы, снижения инфекции урожая новой репродукции, а также увеличение выхода здоровых сеянцев сосны сибирской.

- Внесение биопрепарата приводит к изменению структуры микобиоты почв, снижению численности фитопатогенов и увеличению доли сапротрофных групп организмов, использующих минеральные формы азота, и обеспечивает интенсивность деструкционных процессов в почве.

Список публикаций по теме диссертации:

Статьи в рецензируемых журналах 1. Гайдашева И.И., Садыкова В.С., Бондарь П.Н., Зобова Н.В., Громовых Т.И. Перспективы использования новых биопрепаратов для защиты злаков в Средней Сибири // Вестник КрасГАУ. – 2008. – №1(22). – с. 74-78;

2. Третьякова И.Н., Садыкова В.С., Носкова Н.П., Бондарь П.Н., Гайдашева И.И., Громовых Т.И., Иваницкая А.С., Ижболдина М.В., Барсукова А.В.

Ростстимулирующая активность штаммов рода Streptomyces и Trichoderma и перспективы их использования для микроклонального размножения хвойных // Биотехнология. – 2009. – №1. – с. 39-44;

3. Садыкова В.С., Третьякова И.Н., Носкова Н.Е., Бондарь П.Н.

Антагонистическая и ростстимулирующая активность штаммов родов Trichoderma и перспективы их использования в биоконтроле // Иммунопатология, аллергология, инфектология. – 2009. – №2. – с. 71-72;

4. Бондарь П.Н., Громовых Т.И., Садыкова В.С. Ростстимулирующая активность сибирских штаммов рода Trichoderma в отношении злаковых растений // Иммунопатология, аллергология, инфектология. – 2010. – №1. – с. 89;

5. Садыкова В.С., Бондарь П.Н. Перспективы использования грибов рода Trichoderma в защите злаков от корневых гнилей в Сибири // Вестник КрасГАУ. – 2010. – №2(41). – с. 34-39;

6. Садыкова В.С., Лихачев А.Н., Бондарь П.Н. Ограничение развития комплекса возбудителей корневых гнилей ячменя антагонистами рода Trichoderma // Микология и фитопатология. – 2010. – Т.44, Вып.6 – с. 556-562.

Тезисы докладов и публикации в материалах конференций 1. Садыкова В.С., Бондарь П.Н., Рязанова Т.В., Ушанова В.М. Оценка возможности использования сибирских штаммов Trichoderma для создания биопрепаратов защиты растений // Материалы всероссийской научно-практической конференции «Лесной и химический комплексы – проблемы и решения». – Красноярск, 2007. – Т. 2 – с. 7-11;

2. Бондарь П.Н, Савицкая А.Г. Разработка биопрепаратов на основе биоконтрольных штаммов Trichoderma с использованием растительных отходов техногенной сферы // Материалы 1-ой региональной студенческой научной конференции по биологии. Сибирский федеральный университет, Красноярск, 2007;

3. Бондарь П.Н., Савицкая А.Г. Перспективы получения препаратов защиты растений с использованием растительных отходов техногенной сферы // Материалы международной школы-конференции студентов и молодых ученых «Экология Южной Сибири и сопредельных территорий». – Абакан, 2007. – с. 50-51;

4. Садыкова В.С., Бондарь П.Н., Савицкая А.Г. Оценка возможности использования сибирских штаммов Trichoderma для создания биопрепаратов защиты растений // Тезисы докладов второго съезда микологов России. Современная микология в России. – Москва, 2008. – с. 122;

5. Бондарь П.Н., Садыкова В.С., Медведева М.Г. Скрининг штаммов рода Trichoderma – продуцентов биопрепаратов защиты растений от корневых гнилей злаковых // Материалы всероссийской научно-практической конференции студентов и аспирантов «Непрерывное экологическое образование и экологические проблемы».

– Красноярск, 2008. – с. 233;

6. Бондарь П.Н., Садыкова В.С., Ушанова В.М., Савицкая А.Г.

Биотехнологические аспекты отбора активных штаммов Trichoderma для создания препаратов защиты растений // Материалы международной научной конференции «Современные средства, методы и технологии защиты растений». – Новосибирск, 2008. – с. 30-34;

7. Бондарь П.Н., Барсукова А.В., Ижболдина М.В. Оценка возможности использования сибирских штаммов Trichoderma для создания биопрепаратов нового поколения // Материалы 12-ой международной Пущинской школы-конференции молодых ученых «Биология-наука XXI века». – Пущино, 2008. – с. 197-198;

8. Бондарь П.Н., Гайдашева И.И. Влияние биопрепаратов защиты растений на продуктивность злаков в Средней Сибири // Материалы VII международной научной конференции студентов и молодых ученых «Живые системы и биологическая безопасность населения». – Москва, 2008. – с. 5-7;

9. Садыкова В.С., Громовых Т.И., Третьякова И.Н., Бондарь П.Н., Носкова Н.Е. Антагонистическая и ростстимулирующая активность штаммов родов Trichoderma и Streptomyces и перспективы их использования в биоконтроле // Материалы 5 съезда биотехнологов России. – Москва, 2008. – с. 286-288;

10. Савицкая А.Г., Бондарь П.Н. Перспективы получения препаратов защиты растений с использованием растительных отходов техногенной // Материалы всероссийской научно-практической конференции студентов и аспирантов «Молодые ученые в решении актуальных проблем науки». – Красноярск, 2009. – Т. 2. – с. 151 156;

11. Бондарь П.Н., Ижболдина М.В., Барсукова А.В. Оценка возможности использования сибирских штаммов Trichoderma для создания биопрепаратов защиты растений нового поколения // Материалы всероссийской научно-практической конференции студентов и аспирантов «Непрерывное экологическое образование и экологические проблемы». – Красноярск, 2009. – с. 216-217;

12. Бондарь П.Н., Барсукова А.В., Сиренко А.С. Оценка биологической активности сибирских штаммов Trichoderma и перспективы их использования для микроклонального размножения хвойных растений // Материалы всероссийской научно-практической конференции студентов и аспирантов «Молодые ученые в решении актуальных проблем науки». – Красноярск, 2009. – Т. 1. – с. 109-114;

13. Куляшина Т.А., Бондарь П.Н. Использование коры пихты для получения биопрепарата // Материалы всероссийской научно-практической конференции студентов и аспирантов «Молодые ученые в решении актуальных проблем науки». – Красноярск, 2009.– Т. 1. – с. 245-249;